В кале у новорожденного стафилококк: Стафилококк у детей — причины, симптомы, диагностика и лечение стафилококка у ребенка в Москве в детской клинике «СМ-Доктор»

Содержание

Золотистый стафилококк в кале у ребенка | onwomen.ru

Золотистый стафилококк в кале у ребенка

Золотистым стафилококком называют один из видов грамположительных бактерий шаровидной формы. Для детского организма он очень опасен, поскольку вызывает значительное количество заболеваний. В их перечне присутствуют и легкие кожные инфекции, и смертельно опасные недуги.

Бактерия может привести к развитию гнойно-воспалительных процессов уже в первый день жизни малыша. Дети наиболее подвергаются заражению, ведь иммунитет у них еще слабенький.

Трудности лечения состоят в том, что симптоматику инфицирования золотистым стафилококком легко перепутать с другими патологиями. Можно сразу не распознать, что виновником болезненного состояния малыша выступает именно эта бактерия.

Золотистый стафилококк: норма

Стафилококк локализуется в разных местах тела. Его золотистый вид любит поселяться в кишечнике, слизистой носа и горла.

Чтобы выявить присутствие в организме малыша золотистого стафилококка, необходимо исследовать кал на дисбактериоз. Такой тест проводится уже в родильном доме, когда появляется малейшее подозрение о проникновении бактерии в кишечник крохи.

Исследовать кал нужно минимум два раза с однодневным или двухдневным перерывом. Материал для теста (кал) желательно оперативно доставить в лабораторию (не позже, чем через три часа после испражнения). Это позволит получить корректные результаты.

Установленная норма золотистого стафилококка составляет 104. Это максимальное содержание бактерий в кале ребенка, которому исполнился год. Для грудных детей такой показатель считается высоким.

Важно наблюдать уровень золотистого стафилококка в динамике. Если происходит ускоренный рост бактерий, то это означает развитие инфекции, пришла пора начинать лечение.

Умеренное колебание количества золотистого стафилококка указывает, что состояние ребенка в норме.

Симптомы заражения золотистым стафилококком

Заражение золотистым стафилококком проявляется у каждого малыша по-разному.

При ранней форме инфицирования уже через несколько часов у ребенка происходит:

  • повышение температуры;
  • тошнота и рвотные позывы;
  • нарушение стула;
  • метеоризм.

Когда расстраивается работа ЖКТ, малыш начинает кряхтеть, натуживаться, иногда плакать. Стул у ребенка разжиженный, зеленоватого цвета, содержит белые комочки.

Запор, приходящий на смену поносу, сопровождается выраженным вздутием животика.

Если не облегчить неприятные симптомы, то ребенок может быстро ослабнуть.

Признаки поздней стадии заражения проявляются через три или пять дней после того, как золотистый стафилококк активизировался и удобно устроился в организме малыша. Бактерия выдает себя через:

  • поражение внутренних органов и эпидермиса;
  • заражение крови.

Бывает, хотя и редко, что золотистый стафилококк ничем не проявляется, и инфицирование протекает почти бессимптомно. Разве что возникают незначительные кожные патологии. Но анализ кала обязательно выявит бактерию, если она поселилась в организме малыша и размножилась выше допустимых пределов.

Причины инфицирования золотистым стафилококком

Причины заражения следующие:

  • Ослабление иммунитета. Это – основной виновник инфицирования ребенка. Если защитные силы организма работают не в полную силу, то они не могут эффективно противостоять патогенным микроорганизмам. А болезнетворные бактерии встречаются на каждом шагу.
  • Недостаточное соблюдение гигиены. Малыши кладут в рот все подряд, иногда не моют руки перед тем, как сесть за стол (вина родителей). Порой за ними просто не уследишь, особенно во время прогулки или игры в песочнице. Микроорганизмы обожают грязь, поэтому риск заражения золотистым стафилококком возрастает, если уделять мало времени гигиене малыша и не приучать его к соблюдению личной чистоты.
  • Прямое инфицирование ребенка от человека – носителя бактерий. Им может быть:
  • сотрудник лечебного учреждения;
  • работник пищеблока в детском саду или в школе.

Бактерии проникают сквозь поврежденные места на коже, слизистые оболочки и через пищу.

Золотистый стафилококк может принести и насекомое. Поэтому его укусы всегда следует обрабатывать антисептиком.

Золотистый стафилококк в кале – как помочь малышу в домашних условиях

У малышей уже со второй недели жизни и до полугода функциональные нарушение ЖКТ – явление частое. Кишечник заселяет множество бактерий различных видов. Он никогда не бывает стерильным.

Лечение медикаментами целесообразно проводить только тогда, когда количество золотистого стафилококка в кале малыша в несколько раз превышает допустимое содержание.

В первую очередь, нужно нормализовать работу детского кишечника, не прибегая к фармакологии. Ведь часто лечим одно, но при этом наносим вред другой части организма.

Когда малыш начинает страдать от запоров, можно помочь ему так:

  • Поить настоем семян льна, отваром ромашки аптечной и плодов фенхеля.
  • Использовать готовую смесь растительных масел, например Бейби Калм или Плантекс. Первый препарат содержит масло анисовое, укропное и мятное, второй – эфирное, плодов фенхеля и лактозу. Они помогают пищеварению, ускоряют моторику кишечника и секрецию желудочного сока.
  • Чаще выкладывать малыша на живот. Это поспособствует выходу излишних газов.
  • Помогать крохе проделывать ножками «велосипед».
  • Массажировать животик.
  • Иногда не помешает сделать очистительную клизму или применить препарат Микролакс (слабительное средство, которое вводится через анальное отверстие). Можно поставить свечку (глицериновую).

Такие процедуры следует использовать редко, чтобы ЖКТ не отвык работать самостоятельно.

Если малыш на грудном вскармливании, то маме необходимо временно отказаться от потребления риса, бобовых, капусты, винограда и черники. Эти продукты скрепляют содержимое кишечника, способствуют метеоризму.

После нескольких месяцев стул у ребенка налаживается.

Лечение золотистого стафилококка

Лечить ребенка, инфицированного этим видом бактерии, непросто, поскольку она способна выделять фермент пенициллиназу. Тот наделяет золотистый стафилококк невосприимчивостью к антибиотикам.

Основные направления терапии:

  • Укрепление иммунитета.
  • Нормализация метаболизма.

Младенцы находятся на стационарном лечении в стерильных боксах. Важно не прерывать кормление грудным молоком, которое лучше любого лекарства способствует росту иммунитета. Поэтому мама постоянно должна быть возле малыша.

Когда появляются признаки воспаления тонкой кишки, повышается температура, кал превращается в слизистую зеленую массу, начинается лечение антибиотиками.

Вспомогательным способом терапии является применение отваров календулы, ромашки, настоя череды.

Наличие золотистого стафилококка в кале малыша – еще не повод, чтобы начинать пичкать его лекарствами. Необходимо четко отличать два понятия:

  • стафилококк;
  • стафилококковая инфекция.

Когда у ребенка присутствуют признаки заражения, то это и есть инфицирование золотистым стафилококком.

Когда же симптомы отсутствуют, но бактерия в кале обнаружена, родителям необходимо работать над укреплением иммунитета ребенка. Ослабление организма малыша – провоцирующий фактор инфицирования золотистым стафилококком.

Что делать, обнаружен стафилококк в кале?

Как только малыш появился на свет, он видит и ощущает огромный мир, который не только прекрасен, но еще и таит в себе опасности. Самой большой из них считаются инфекции. Наиболее распространена и опасна стафилококковая инфекция (внутрибольничная). Это заболевание отличается большой нагрузкой еще на несформировавшийся иммунитет малыша. Более того, оно может спровоцировать серьезные последствия.

Условно патогенный микроб

Как правило, самым распространенным патогеном является золотистый стафилококк, который оказывает свое токсическое действие на кишечник только что появившегося на свет малыша. Помимо этого, он может спровоцировать в неокрепшем организме следующие заболевания: парапроктит, энтероколит, энтерит и пищевую интоксикацию. Более подробнее о действии этой инфекции можно посмотреть тут на baby.dn.ua. Выявить можно стафилококк в кале новорожденного. Свидетельствовать о наличии стафилококковой инфекции у ребенка может рвота, понос, высокая температура и наличие микробов в каловых массах ребенка.

Однако, не стоит сразу сильно переживать и паниковать, поскольку данная инфекция относится к условно патогенным и может быть обнаружена абсолютно у любого живущего на нашей планете человека.

Симптоматика и лечение золотистого стафилококка

Итак, клинические симптомы присутствия золотистого стафилококка напоминают дисбактериоз либо острую кишечную инфекцию. Стул ребенка представляет собой кашицеобразную массу водянистой консистенции, в которой может присутствовать слизь. Кроме этого, наблюдаются отсутствие аппетита, слабость и вялость, а также боли в животе. Естественно, что первым признаком станет плач ребенка. Родителям следует особое внимание обратить на появление зеленоватого кала и наличие пенистых образований, а также болей в животике. Данные симптомы характеризую наличие инфекции. Для установления точного диагноза должен быть найден стафилококк в кале новорожденного, либо в его мазке. Лечение стафилококковой инфекции проводится посредством приема лекарственных препаратов.

Стоит заметить, что оно направлено на устранение причин заболевания. Чтобы повысить эффект лечения нужно укрепить иммунитет с помощью витаминов, иммуномодуляторов и пробиотиков.

золотистый стафилококк в кале у новорожденного фото стула

Стафилококковые инфекции – это категория заболеваний, спровоцированных микроорганизмом «стафилококк».

У детей, возраст которых не достиг года, эти болезни могут выражаться в качестве небольших воспалений кожных покровов, фарингита или серьёзными патологиями, такими как пневмония, сепсис, менингит.

Содержание статьи

Стафилококк в кале у ребёнка

Каждому родителю стоит обратить особое внимание если обнаружен стафилококк в кале у грудничка.

Золотистый стафилококк является грамположительным микроорганизмом, входящим в группу самых распространённых инфекций. Статистические данные свидетельствуют о том, что у двадцати процентов детей в возрасте двух лет в полости носа присутствует этот микроорганизм.

К четырём-шести годам число носителей бактерии возрастает до пятидесяти процентов. Однако присутствующий золотистый стафилококк у грудничка в кале не всегда говорит о наличии патологий.

Данный вид микроорганизмов относится к условно-патогенным. Определённое их количество постоянно находится на верхнем слое кожи, на слизистом эпителии в полости носа, глотки, глаз и рта.

При хорошем устойчивом иммунитете они не наносят вреда. Однако при снижении естественной защиты организма, бактерии активизируются.

В процессе своей жизненной деятельности они вырабатывают специфический токсин, который и провоцирует возникновение различных патологий.

Важно! В организме ребёнка не вырабатываются иммунные антитела к этому роду бактерий, поэтому сохраняется риск повторного инфицирования уже переболевшего пациента.

Причины возникновения инфекций

Для предотвращения инфицирования ребенка стафилококками надо знать причины, которые могут спровоцировать рост их колоний.

Зачастую определяется золотистый стафилококк в кале у новорожденного, находящегося в своеобразной группе риска по следующим причинам:

  • во время беременности возникли какие-либо патологии;
  • роды были трудными, осложнёнными или преждевременными;
  • во время рождения ребёнок длительное время находился без околоплодных вод;
  • ребёнок родился недоношенным;
  • у малыша ослаблена иммунная защита организма;
  • после рождения не соблюдались правила гигиены матери и ребёнка;
  • в организме матери присутствует бактерия стафилококка;
  • после рождения ребёнок длительное время находился в родильном доме.

Стоит понимать, что и ребёнок, не входящий в группу риска, может заразиться инфекцией. Стафилококк у новорожденных в кале (фото стула ниже) может появиться при следующих обстоятельствах:

  • заражение через кровь, при попадании бактерий в ранку на пупке;
  • инфицирование при кормлении грудью при наличии у матери трещинок у сосков;
  • заражение при контакте с некачественно обработанными предметами ухода за ребёнком, игрушками, сосками;
  • инфицирование в медицинском учреждении при контакте с медицинскими инструментами и оборудованием.

Симптомы развития инфекции у грудничков

Зачастую золотистый стафилококк у грудничка в кале симптомы и его проявления схожи с признаками дисбактериоза, ОРВИ и других инфекций кишечнике.

Период инкубации и симптомы стафилококка у грудничка в кале зависят от конкретного вида инфекции, верного возраста пациента и может составлять несколько часов или суток.

Инфекция раннего вида проявляется в первые несколько часов. Поздняя форма даёт о себе знать спустя три-четыре дня.

При обнаружении стафилококка у новорожденных в кале, симптомы проявляются следующие:

  • стул приобретает зеленоватый оттенок;
  • во время испражнения возникают образования в виде пены;
  • в области живота возникают боли;
  • на коже ребёнка образуются разного рода образования: фурункулы, гнойники, сыпь, пятна;
  • развивается конъюнктивит;
  • повышается температура тела;
  • ухудшается общее состояние малыша.

Важно! Поставить верный диагноз в силе только квалифицированный специалист. Поэтому при наличии каких-либо подозрений на инфекцию надо срочно обратиться за консультацией к врачу.

Диагностика заболевания

Для постановки верного диагноза надо сдать материал для обследования в лабораторию. В качестве исследуемого может использоваться кал или мазок со слизистых ребёнка.

Стоит помнить, что присутствие в обследуемом биологическом материале пациента бактерий стафилококка, не обязательно спровоцировало возникшие симптомы. Из-за их условно-патогенной природы, установлена особая норма присутствия этих микроорганизмов в обследуемом материале.

Конкретный допустимый уровень стафилококков в организме величина спорная. Но большинство учёных сходится во мнении: норма золотистого стафилококка в кале у грудничка — 10

3 бактерии на один грамм исследуемого материала.

Однако, в оценке вреда для здоровья прежде всего надо отталкиваться от поведения микроорганизма. Если даже в количестве, не превышающем нормы, эти микроорганизмы провоцируют нарушения в работе системы пищеварения и появляются симптомы общей интоксикации организма, то надо обязательно провести лечебную терапию.

Если же стафилококк обнаружен в результатах, но никак себя не проявляет, то стоит регулярно посещать специалиста и сделать упор на общее укрепление системы иммунитета.

ВНИМАНИЕ! Кормящая мама должна обязательно сдать грудное молоко на обследование. Потому как велик риск инфицирования ребёнка от матери через молоко.

Причины, провоцирующие поселение стафилококков в организме и их рост, могут самыми разными. Если у ребёнка сильно проявляются симптомы инфицирования, и эти микроорганизмы в обследуемом материале обнаружены, то надо обязательно провести комплексную терапию для их устранения.

Когда обнаружен золотистый стафилококк у грудничка в кале, лечение заболевания конкретными препаратами может назначить только врач.

Лечение

Терапия основывается на удаление причины, вызвавшей заболевание. Микроорганизмы этого вида обладают хорошей устойчивостью к некоторым видам антибактериальных средств.

Поэтому при проведении бактериологического посева параллельно определяется и чувствительность роста бактериологических колоний к разным лекарствам. На основе данных антибиотикограммы специалист прописывает к приёму те или иные препараты.

При лечении детей до года, специалисты используют антибиотиками из ряда пенициллиновых или цефалоспоринов.

Если выявленная разновидность микроорганизма обладает повышенной устойчивостью к лекарствам, то назначаются

специализированные бактериофаги.

Это специальные вещества, которые проникая внутрь болезнетворного микроорганизма вызывают его разрушение и гибель.Их действие направлено строго на определённый вид бактерий, не затрагивая полезные.

Для того чтобы лечение было более эффективным надо принять меры по повышению естественной защиты организма ребёнка.

В комплексе с антибактериальными препаратами назначаются разного рода иммуномодуляторы, а также комплексы витаминов, которые помогают нормализовать обменные процессы в организме.

Важно! Если в молоке матери не выявлены болезнетворные микроорганизмы, то желательно продолжать грудное вскармливание, потому как это тоже в значительной степени укрепляет иммунную защиту малыша.

Процесс лечения малыша от стафилококковой инфекции должен протекать в стационаре под постоянным наблюдением квалифицированного специалиста. Самостоятельное лечение в домашних условиях недопустимо и может привести к серьёзным последствиям.

При высоком уровне стафилококка у новорожденных в кале, лечение ребёнка требует вспомогательной терапии с применением пробиотиков. Продолжительность курса терапии антибиотиками составляет от пяти до семи дней.

За это время уничтожаются не только болезнетворные, но и полезные микроорганизмы. Поэтому во избежание дисбактериоза надо обязательно пропить курс препаратов, восстанавливающих микрофлору кишечника.

Резюме

Инфекции, спровоцированные стафилококком сегодня широко распространены как среди детей, так и взрослого населения.

Золотистый стафилококк грудных детей кале проявляется наиболее выраженной симптоматикой. Заболевание способно вызвать серьёзные осложнения и нарушения в работе организма.

При обнаружении каких-либо признаков стафилококковой инфекции у ребёнка надо немедленно обратиться за консультацией к квалифицированному специалисту. Ни в коем случае нельзя при наличии стафилококка у грудничка в кале, проводить лечение самостоятельно в условиях дома.

Стоит помнить, что этот вид микроорганизмов считается условно-патогенным, поэтому стафилококк в кале у грудного ребенка в определённом количестве может присутствовать.

В этом случае надо проконсультироваться с опытным специалистом и предпринять меры по повышению естественной защиты организма малыша и меры профилактики по предотвращению развития заболевания.

Вконтакте

Facebook

Twitter

Google+

Одноклассники

Золотистый стафилококк в кишечнике у грудничка — симптомы и лечение

Простенькие и даже «симпатичные» на взгляд под микроскопом золотистые стафилококки показали себя матерыми борцами за выживание даже в самых сложных внешних условиях.

Всего лишь за 50 лет массовой терапии людей антибиотиками по поводу и без, начиная с самого раннего детского возраста, данные микробы умудрились мутировать столь скоро и разнообразно, что на сегодняшний день стали настоящим бичом родильных домов и педиатрических стационаров.

Симптомы золотистого стафилококка

При заражении стафилококком симптомы у грудничка проявляются довольно скоро.

Золотистый стафилококк, норма которого в организме равна нулю – микроб агрессивный и проявляет себя почти сразу от момента заражения. Если инфицирование произошло в условиях роддома, то уже к 3- 5 суткам от момента рождения ребенок станет мучиться животом. Так как у ребенка на грудном вскармливании стул и в норме может быть достаточно частым (после каждого кормления), то на мысль о стафилококковой инфекции может натолкнуть:

  • сопутствующая кожная сыпь у ребенка
  • длительно мокнущий пупок
  • частые срыгивания фонтаном
  • появление крови в кале
  • слизи в кале
  • желтый, пенистый, обильный и частый стул.

У детей старше месяца при заражении стафилококком клиника может протекать по типу токсикоинфекции или по типу гастроэнтероколита.

Диагностика и лечение золотистого стафилококка

Сразу стоит оговориться, что идея о полном избавлении молодого растущего организма от стафилококка – это утопия.

Золотистый стафилококк живет везде. Он прекрасно переносит:

  • замораживание,
  • высушивание,
  • выпаривание,
  • облучение ультрафиолетом,
  • большинство антисептиков, включая любимые всеми хлорсодержащие “Доместосы” и прочие ядохимикаты, реклама которых обещает стопроцентное уничтожение коварных бактерий, но на деле не продвигается дальше повышения аллергизации детей и взрослых.

Так, если для детей первых трех лет жизни более характерны стафилококковые поражения желудочно-кишечного тракта и кожи, то у более старших детей бактерии переселяются в нос, околоносовые пазухи и миндалины, обеспечивая своего хозяина на ближайшие годы бесперебойными синуситами, гнойными соплями и ангинами, постепенно переходящими в хронический тонзиллит.

Терапия инфекционного поражения ЖКТ у детей сводится к трем основным направлениям:

  1. борьбе с инфекцией,
  2. коррекции нарушений водно-электролитного баланса,
  3. организации лечебного питания.

Профилактика заражения золотистым стафилококком

Первичную профилактику заражения золотистым стафилококком в месте проживания ребенка стоит направить по пути:

  • своевременного проветривания помещений
  • избавления их от пыли
  • и периодического мытья моющихся поверхностей обычным раствором хозяйственного мыла.

Предметы для детского питания — бутылочки и соски должны мыться и кипятиться.

Так как, к большому сожалению, высокий процент взрослых имеет хронические стафилококковые инфекции ротоглотки, носа, пазух и зубов, то на первый месяц контакты ребенка с посторонними взрослыми разумно исключить. По тем же соображениям нельзя позволять дедушкам и бабушкам, а также многочисленным родственникам и знакомым целовать ребенка до полугода-года куда-либо, кроме пяточек и ножек.

Что касается маниакальной привычки некоторых мам водить ребенка до года:

  • на профосмотры без показаний,
  • водить ребенка на массаж в общую поликлинику,
  • записывать детей младше года в разные развивающие клубы, где предметы общего пользования не обрабатываются должным образом, а скученность детей и их «текучесть» создает все условия для процветания инфекций.

В наше время мамочкам следует тщательно взвешивать риск и пользу от подобных мероприятий.

К кому обратиться при золотистом стафилококке у новорожденных

Педиатры Москвы — последние отзывы

Врач не компетентный. Я обратился к нему с подтверждённым аскаридозом. Доктор ничего мне не объяснил как устроена болезнь, сказал если хотите то пейте этот препарат и ничего про него не разъяснил. Он больше рассказывал как лечить гастрит и желудок, что мне было ненужно.

Иван, 17 апреля 2021

Меня удовлетворило общение с доктором и качество оказанных услуг. Она внимательный и отзывчивый специалист.

Елена, 10 апреля 2021

Добрый, милый и общительный доктор, который может найти подход к детям. Она доступно все мне объяснила, обследовала ребенка, назначила анализы и записала на повторный прием. Врач хорошо, ласково и приятно общалась с ребенком.

На модерации, 19 апреля 2021

Ужасный доктор. Она пришла, руки не помыла, не посмотрела документы и стала ставить диагнозы в коридоре. У врача нет никакой этики. Специалист назначила пациентке лечение, которое ей не подходит, потому что у нее повышен калий. Врач назначила мочегонные препараты, которые его сберегают.

На модерации, 19 апреля 2021

Доктор профессиональный. У ребёнка началась аллергия. Она с нами поговорила и назначила сдачу анализов.

На модерации, 19 апреля 2021

Доктор вполне внимательный. Она провела обследование и назначила дополнительные исследования.

На модерации, 19 апреля 2021

Доктор очень обстоятельный. Она нашла с ребенком контакт, задала много вопросов, расспросила, вникла во все детали, скорректировала лечение и посоветовала сдать мазок из носа. Сказала если от лечения не будет улучшения, то тогда нужно будет детально углубляться в проблему аллергии.

На модерации, 19 апреля 2021

Доктор приятный в общении. Она всё объяснила мне. После назначений врача у нас через три дня пошли улучшения. Мы довольны!

Рая, 18 апреля 2021

Врач хороший. Она всё лёгким языком объяснила, что нужно и что нет и порекомендовала доступные лекарства. Доктор нежно и заботливо отнеслась.

Виктория, 18 апреля 2021

Врач очень добрый и внимательный. Она приятна в общение. Доктор знает что делает и корректно себя ведет. Специалист популярно все нам объяснила и рассказала.

Руслан, 17 апреля 2021

Показать 10 отзывов из 3725

анализ крови на золотистый стафилококк у взрослых и детей

Чем опасна инфекция?

Насчитывается до тридцати видов стафилококковых бактерий, некоторые из них живут в организме, не нанося ему вреда. Наиболее опасны золотистый, сапрофитный и эпидермальный стафилококки. Первый поражает абсолютно любые ткани и органы у людей любого возраста. Микроорганизм способен вызывать пневмонию, пищевое отравление, заражение крови, менингит и другие опасные заболевания.

Если анализ на золотистый стафилококк оказался положительным, пациенту немедленно назначается курс антибиотиков, но, к сожалению, эта инфекция с трудом поддается лечению, она устойчива к высоким температурам, спирту, антибиотикам.

Когда необходимо сдать анализы на стафилококк?

У взрослых тревожными симптомами являются частые высыпания на коже, воспаления потовых и сальных желез. Даже обычный насморк, который трудно вылечить, кашель и боль в горле могут свидетельствовать об активности данных бактерий и являться серьезным поводом, чтобы сдать анализ из носа на стафилококк.

Симптомы зависят от локализации бактерии. Поражаться могут:

  • кожа: гнойные высыпания;
  • кости: боли при движении, припухлость;
  • пищеварительная система: рвота или тошнота, температура, диарея;
  • сердце: шумы;
  • половая система: затрудненное мочеиспускание, тянущие ощущения в спине;
  • дыхательная система: покраснение и боль в горле, белый налет.

В группе риска — беременные женщины, для которых анализ крови на стафилококк и стрептококк входят в перечень обязательных исследований; работники медицинских учреждений и заведений общественного питания; больные сахарным диабетом, ВИЧ-положительные. Исследование также проводится при травмах кожи, онкологических заболеваниях.

Заражение может произойти воздушно-капельным путем, в быту, через биологические жидкости, с пищей.

Виды анализов

Решение, на какое исследование направить пациента, принимает лечащий врач, исходя из симптомов и общей картины заболевания. Наиболее распространен анализ крови на стафилококк, но также биоматериал берут из зева, носа, ушей, ран, даже грудное молоко подвергается проверке. Информативны также анализ кала на стафилококк и ректальный мазок.

Направление может быть выписано терапевтом, лор-врачом, маммологом, дерматологом, гастроэнтерологом, иммунологом и другими специалистами.

Анализы на стафилококк у детей

У грудничков анализ из зева на стафилококк берут при воспалительном процессе в гортани или глотке. Если у малыша диарея, может быть назначен анализ кала на стафилококк. У новорожденных забор производится посредством стерильной пленки. Детям постарше данное исследование предстоит пройти, если они часто болеют бронхитом или пневмонией. В этом случае на бакпосев сдается мокрота. Риниты, синуситы, фарингиты также заставляют заподозрить активность бактерий стафилококка. В этом случае пациент проверяется на золотистый стафилококк зева, — анализ обычно безболезненный и не вызывает серьезных сложностей.

Анализы в «ВЕРАМЕД»

Почему вам удобно сдать анализы у нас? Потому что в «ВЕРАМЕД» это можно сделать быстро, без очередей и с максимально достоверным результатом, которого позволяют добиться качественные реактивы. Мы проведем анализы любой сложности, в том числе анализ на стафилококк новорожденного ребенка.

Сдать любые другие анализы вы можете в наших медицинских центрах в Одинцове и Звенигороде в любой день недели. Дополнительную информацию по стоимости услуг и подготовке к исследованию можно получить у сотрудников кол-центра: 8(495)150-03-03.


Микробиологическое (культуральное) исследование на золотистый стафилококк (Staphylococcus aureus) с определением чувствительности к антимикробным препаратам

Метод исследования

  • Культуральные исследования

Staphylococcus aureus (золотистый стафилококк) хорошо известен как возбудитель гнойно-септических инфекций у человека и животных. S. aureus наиболее часто выделяется при гнойной патологии: фолликулитах, фурункулах и карбункулах, гидраденитах, маститах, раневых инфекциях, бактериемиях и эндокардитах, менингитах, легочных инфекциях, остеомиелитах и артритах, а так же пищевых отравлениях, синдроме токсического шока. Источником стафилококковых инфекций является больной человек или здоровый носитель. Пути передачи: воздушно-капельный, воздушно-пылевой, контактный, пищевой. При пищевом пути передачи S. aureus вызывают пищевую токсикоинфекцию (отравление), характеризующуюся острым, бурным началом, выраженной интоксикацией, болью в животе, возможным повышением температуры. Фактором передачи являются молоко и молочные продукты, кондитерские изделия. Инкубационный период при пищевом отравлении стафилококковой этиологии – 2-4 часа. Восприимчивость к инфекции зависит от общего состояния организма и возраста. Наиболее восприимчивы дети, особенно новорожденные и грудного возраста.

Культуральные исследования выполняются с применением высококачественных транспортных и питательных сред ведущих мировых производителей. Идентификацию выделенных микроорганизмов проводят с применением технологии лазерной времяпролетной масс-спектрометрии («MALDI-TOF MS», Microflex LT, Bruker, Германия). На следующем этапе лабораторного исследования выполняется определение чувствительности возбудителя к антимикробным препаратам на современных микробиологических анализаторах. Выбор спектра зависит от выявленного возбудителя, интерпретация определения чувствительности соответствует стандартам EUCAST (Европейский комитет по определению чувствительности к антимикробным препаратам (European Committee Antimicrobial Susceptibility Testing)).

Показания к исследованию:

  • Обследование лиц с симпотомами пищевого отравления;
  • Подбор антибактериальной терапии;
  • Оценка эффективности антибактериальной терапии.

Характеристика штаммов Staphylococcus aureus, выделенных из фекалий здоровых новорожденных и потенциальных микробных передач от матери ребенку при грудном вскармливании | FEMS Microbiology Ecology

Двадцать одна женщина и их соответствующие дети-одиночки участвовали в этом исследовании, предоставив образцы грудного молока и фекалий (на 7, 14 и 35 дни после рождения), соответственно, используемые для выздоровления Staphylococcus aureus . Целью было выследить лафет S.aureus в молоке и фекалиях пар мать-младенец, а также для определения генетических линий изолятов, их потенциальных клональных взаимоотношений и их содержания в кластерных генах устойчивости к противомикробным препаратам, вирулентности и уклонения от иммунитета. Молекулярная характеристика была выполнена с помощью ПЦР и секвенирования. Клональные отношения между изолятами матери и ребенка определяли с помощью типирования spa , мультилокусного последовательного типирования (MLST) и гель-электрофореза в импульсном поле (PFGE). Staphylococcus aureus был выделен из образцов молока 6 из 21 матери (16 изолятов) и из образцов фекалий 12 из 21 ребенка (25 изолятов).Из 41 извлеченных S. aureus 18 были метициллин-устойчивыми (MRSA) и 23 метициллин-чувствительными (MSSA). Среди S. aureus было обнаружено двенадцать типов differentes spa и восемь типов последовательностей. Преобладающими клональными комплексами были CC5 (43,9%) и CC30 (36,6%). Штаммы MRSA имели профиль множественной лекарственной устойчивости, 65,2% штаммов MSSA содержали ген токсина tsst-1 , а 26,8% всех штаммов несли ген cna . Потенциальный от матери к ребенку S.Передача aureus была продемонстрирована в четырех случаях при типировании spa , MLST и PFGE (передача штаммов t322 / ST5 / CC5-PFGE-A, t136 / ST34 / CC30-PFGE-B и t021 / ST1869 / CC30-PFGE-C ). Грудное вскармливание, по-видимому, способствует ранней кишечной колонизации S. aureus у новорожденных, что может повлиять на развитие иммунной системы.

ВВЕДЕНИЕ

Ранняя жизнь, по-видимому, является решающим периодом для правильного установления микробиоты кишечника с краткосрочными, среднесрочными и долгосрочными последствиями для здоровья хозяина (Sim et al., 2013). На этом жизненном этапе вертикальная передача микробов от матери ребенку обычно играет ключевую роль в начальной колонизации кишечника новорожденного (Cho and Blaser 2012). Несмотря на то, что существует множество исследований потенциальной передачи этих бактерий, наиболее часто участвующих в неонатальном сепсисе (например, Streptococcus agalactiae , Escherichia coli ), данные о других бактериях, которые могут иметь эпидемиологическое значение в обществе, например, Staphylococcus aureus , редки (Bourgeois-Nicolaos et al., 2010; Delgado et al. , 2011; Jimenez-Truque et al. , 2012; Лешем и др. , 2012).

Staphylococcus aureus — это вид, обычно встречающийся в составе нормальной микробиоты человека, в основном в ротоглотке, носу и коже, хотя его также можно найти как часть микробиоты кишечника (Dominguez, Zarazaga and Torres 2002; Benito ). et al., 2013) как здоровых, так и госпитализированных хозяев. Золотистый стафилококк — чрезвычайно универсальный условно-патогенный микроорганизм с множеством механизмов, способных вызывать заболевание и обходить иммунную защиту.Следовательно, заселение доношенных новорожденных этим видом может увеличить риск инфицирования в раннем возрасте (van Belkum et al. , 2009). Тем не менее, в других исследованиях сообщается, что перинатальная колонизация S. aureus может иметь положительный эффект на развитие иммунной системы новорожденных (Lundell et al. , 2007).

Staphylococcus aureus может содержать или приобретать различные детерминанты устойчивости, и среди них приобретение гена mecA особенно актуально, поскольку он придает устойчивость к метициллину и большинству бета-лактамов.Метициллин-устойчивый S. aureus (MRSA) может поражать как госпитализированных (HA-MRSA), так и местных (CA-MRSA) пациентов. С другой стороны, S. aureus может продуцировать большое количество факторов вирулентности, которые могут усугубить клинический исход стафилококковых инфекций (Jarraud et al. , 2002). Некоторые из наиболее важных факторов вирулентности — лейкоцидин Пантона-Валентайна (PVL), токсин 1 синдрома токсического шока (TSST-1), различные гемолизины, эксфолиатины, энтеротоксины и другие факторы вирулентности, которые способствуют клеточной инвазии, росту бактерий и уклонению от иммунитета (Sabat et al., 2000; Cucarella et al. , 2001; Жарро и др. , 2002; van Wamel et al. , 2006; Витте и др. , 2007).

В последнее время возник особый интерес к изучению генетических линий изолятов S. aureus , циркулирующих в различных средах, с целью отслеживания их эволюции в разных нишах и определения потенциальных первоисточников. В этом смысле кластер иммунного уклонения (IEC) может быть важным маркером, разрешающим S .aureus , чтобы избежать действия некоторых компонентов врожденной иммунной системы человека. Изоляты, адаптированные для животных-хозяев, часто не имеют генов системы IEC (Benito et al. , 2013).

В предыдущем исследовании нашей группы оценивалось культивируемое бактериальное разнообразие молока и фекалий 16 кормящих матерей и их грудных детей, соответственно (Jiménez et al. , 2008). Выделенные изолятов S. epidermidis и энтерококков были полностью охарактеризованы (Jiménez et al., 2008). Кроме того, изолята S. aureus могли быть выделены из некоторых из этих пар мать-младенец, но они не были охарактеризованы. Целью этого исследования было, во-первых, отследить носительство S. aureus в образцах молока и детских фекалий, предоставленных 21 парой мать-ребенок (включая 16 из предыдущего исследования и 5 дополнительных, привлеченных в этом исследовании). и, позднее, для определения генетических линий изолятов, потенциальных клональных взаимоотношений между этими изолятами, полученных в одной паре мать-младенец, и их содержания в генах устойчивости к противомикробным препаратам, а также в генах вирулентности и IEC.

МЕТОДЫ

Сборник образцов

Всего в исследовании участвовала 21 женщина и их соответствующие дети-одиночки, которые соответствовали следующим характеристикам: (a) здоровые женщины с нормальной доношенной беременностью; (б) вагинальные роды; (c) отсутствие перинатальных проблем у младенца и / или матери, включая мастит, и отсутствие использования антибиотиков во время родов; и (d) младенцы, находящиеся на исключительно грудном вскармливании. Все добровольцы дали письменное информированное согласие на протокол, который был одобрен этическими комитетами больницы Joan XXIII (Таррагона, Испания) и больницы Clínico San Carlos (Мадрид, Испания).Женщины и их младенцы предоставили образцы грудного молока и фекалий соответственно на 7, 14 и 35 дни после рождения. Образцы молока собирали в стерильных условиях в стерильную пробирку путем ручного сцеживания с использованием стерильных перчаток. Раньше соски и ареола молочной железы промывались стерильной водой с мылом и пропитывались хлоргексидином (Cristalmina, Salvat, Барселона, Испания). Первые капли (~ 500 мкл) были отброшены. Образцы фекалий (~ 5 г) собирали в отдельные стерильные контейнеры для фекалий.Все образцы хранились при 4ºC до доставки в лабораторию (максимум 12 часов) и сразу же обрабатывались.

Процедуры отбора проб

изолятов S. aureus

Разведения образцов помещали на две селективные среды: агар Байрда – Паркера и агар Колумбия – Налидиксовая кислота (BioMerieux, Marcy l Etoile, Франция). От 5 до 10 репрезентативных изолятов, морфология колоний и другие фенотипические характеристики (форма клеток, окрашивание по Граму, активность каталазы и оксидазы) были совместимы с таковыми для стафилококков (включая, по крайней мере, одного представителя каждой морфологии колонии), были отобраны из каждого питательная среда, выращенная в бульоне BHI и хранящаяся при -80ºC в присутствии глицерина (30%, об. / об.).Все изоляты были идентифицированы до видового уровня с помощью метода мультиплексной ПЦР на основе генов dnaJ (Jiménez et al. , 2008), и идентификация была позже подтверждена с помощью MALDI-TOF (VITEK MS, BioMerieux). Впоследствии в это исследование были включены все изоляты, которые были идентифицированы как S. aureus либо из образцов молока, либо из фекалий. Присутствие гена nuc было также изучено для дальнейшего подтверждения изолятов S. aureus (Lozano et al., 2011).

Молекулярное типирование изолятов

Молекулярную характеристику изолятов S. aureus проводили различными молекулярными методами. Было проведено типирование Spa (Harmsen et al. , 2003) и полученные последовательности проанализированы с использованием программного обеспечения Ridom Staph Type версии 1.5.21 (Ridom GmbH). Определение аллотипов agr — дополнительных регуляторных локусов генов — выполняли с помощью двух мультиплексных ПЦР (Shopsin et al., 2003) для всех изолятов. Мультилокусное типирование последовательностей (MLST) было также выполнено для одного представителя каждого типа spa , обнаруженного в этом исследовании, для определения типа последовательности (ST) и клонального комплекса (CC) изолятов (www.saureus.mlst.net).

Гель-электрофорез в импульсном поле (PFGE)

Когда аналогичные типы spa были идентифицированы среди изолятов, полученных от данной матери и ее соответствующего ребенка (и, следовательно, предполагая потенциальную передачу от матери ребенку), PFGE провел анализ клонального родства (Murchan и другие., 2003) тотальной ДНК, расщепленной эндонуклеазой Sma I (New England Biolabs). Гель готовили на 1,8% агаре и прогоняли в течение 22 часов при 6 В см –1 , используя время импульса от 5 до 50 с. Электрофорез проводили в системе CHEF DR-II (Bio-Rad). Стандартный ДНК-маркер (Lambda Ladder PFG Marker, New England Biolab) был включен в гель.

Тестирование чувствительности и обнаружение генов устойчивости к противомикробным препаратам

Тестирование чувствительности проводилось методом диско-диффузионного агара для 17 противомикробных препаратов (пенициллин, оксациллин, цефокситин, эритромицин, клиндамицин, ципрофлоксацин, гентамицин, стрептомицин, канамицин, тобрамицин, тетрациклино-маликомицин, сульфаметамицин – мантоломициклин, хлорамприциклин, хлорамприптолид). фузидиевая кислота) в соответствии с рекомендациями CLSI и EUCAST (CLSI 2014; EUCAST 2014).Кроме того, был проведен D-тест для выявления индуцибельной устойчивости к клиндамицину (CLSI 2014).

Наличие 25 генов устойчивости [ mec (A) , blaZ , tet (M) , tet (K) , tet (L) , tet (O) , erm). (A) , мм (B) , мм (C) , мм (F) , мм (T) , msr (A) , msr (B) , миль / час ( C) , lnu (A) , lnu (B) , vga (A) , ant (4 ) -Ia , aph (3 ) -IIIa , aac (6 ) Ie-aph (2 ) , aad (A) , aad (E) , str , fus (B) и fus (C) ] в S.aureus изучали методом ПЦР (Удо, Аль-Свейл и Норонха, 2003; Лозано, и др., , 2011; Бенито, и др., , 2013).

Обнаружение генов вирулентности

Анализ профиля вирулентности был выполнен методом ПЦР для выявления следующих генетических детерминант: лейкоцидин Пантона-Валентайна ( lukF / lukS- PV ) , токсин синдрома токсического шока ( tsst-1 ) и эксфолиативный токсин A ( eta ), B ( etd ) и D ( etd ).Кроме того, гены, кодирующие лейкоцидины DE ( lukD-lukE ) и M ( lukM ), ауреолизин ( aur ), ассоциированный с биопленкой белок ( п.н.) и коллаген-связывающий белок ( cna ). ) также были изучены с помощью ПЦР (Sabat et al. , 2000; Cucarella et al. , 2001; Witte et al. , 2007; Lozano et al. , 2011; Benito et al. , 2013).

Кластер иммунного уклонения

Пять генов, составляющих IEC ( scn , chp, sak и sea или sep ), были изучены с помощью ПЦР.В зависимости от наличия или отсутствия этих генов и их различных комбинаций, все изолятов S. aureus были разделены на семь типов IEC в соответствии с ранее описанными схемами (van Wamel et al. , 2006).

РЕЗУЛЬТАТЫ

Выделение

S. aureus

Staphylococcus aureus был выделен из образцов молока 6 из 21 матери (16 изолятов) и из образцов фекалий 12 из 21 младенца (25 изолятов) (Таблица 1).Более конкретно, S. aureus было получено в образцах фекалий двух младенцев на 7-й день, трех — на 14-й день и десяти — на 35-й день после рождения (таблица 2). Золотистый стафилококк был обнаружен как в молоке матери, так и в фекалиях младенца в шести из исследованных случаев. Выявлено четыре потенциальных случая передачи инфекции от матери ребенку при грудном вскармливании (таблица 1).

Таблица 1.

Основные характеристики штаммов S. aureus , выделенных от матерей и младенцев в этом исследовании.

367 ST34 / CC30 903 90 ER367 ST5 / CC3 903 90 367 t136660367 aur3 903-1, cna, cna3 CC 0367 ER CC 903 903 903 903 , cna, tsst-1 0 , cna 0 B
. . MRSA / . № . Молекулярное типирование . Устойчивость к противомикробным препаратам . Факторы вирулентности .
Корпус . Происхождение . MSSA . штаммов . СПА тип . агр . SCC МЭК . MLST / CC и . Фенотип b . Генотип . IEC тип c . Другие гены d .
A. Случаи потенциальной передачи S. aureus от матери к ребенку
1 M Инфант t322 II IV ST5 / CC5 ERY, CLI, GEN, TOB erm (C), aac (6 ) -Ie-aph (2 ), муравей (4 ) -Ia F luk-DE, aur
Мать MRSA 7 t322 II CC ERY, CLI, GEN, TOB, KAN erm (C), lnu (A), aac (6 ) -Ie-aph (2 ), ant (4 ) -Ia, aph (3 ) -III3 F luk-DE, aur 901 15 2 , эта 2
Мать MSSA 1 t136 III ST34 / CC30 luk-DE, aur, tsst-1
2 младенец MRSA 5 t322 II IVOB erm (C), aac (6 ) -Ie-aph (2 ), ant (4 ) -Ia F luk-DE, aur
Материнская часть MRSA 1 t322 II IV ST5 / CC5 ERY, CLI, GEN, TOB3, TOB (CAN) A), aac (6 ) -Ie-aph (2 ), муравей (4 ) -Ia F luk-DE, aur, eta
Младенец MSSA 1 t ST34 / CC30 E aur, tsst-1
3 младенец MSSA ST45 / CC45 B aur, cna
для младенцев MSSA 3 CC — E luk-DE, eta, aur, tsst-1
Mother MSSA 1 III ST34 / CC30 E luk-DE, eta, aur, tsst-1
MSSA 1 t021 III ST1869 / CC30 MSSA 1 t021 III ST1869 / CC30 aur, cna 903, tsst 9030 -3Случаи NON S. aureus передача матери ребенку
5 Младенец MRSA II ST5 / CC5 ERY, CLI, GEN, TOB erm (C), aac (6 ) -Ie-aph (2 ), ant (4 ) -Ia F luk-DE, aur
6 Младенец MSSA 1 t015 I ST str F luk-DE, aur, cna
Материнский MSSA 1 t021 III aur, cna, tsst-1
7 Младенец MRSA 1 t002 II ST II CC GEN, TOB, STR, FUS, CIP msrA, mrsB, aac (6 ) -Ie-aph (2 ), ant (4 ) -Ia, str, fus (C) E luk-DE, aur
8 Младенцы MSSA 1 t012 III — 903 903 CC — A luk-DE, aur, cna, tsst-1
младенец MSSA 1 t5204 CC К luk-DE, aur
9 для младенцев MSSA 1 t122 ​​ III ST30 / CC30 STR
10 для младенцев MSSA 1 t10664 I ST8 / CC8
11 Младенцы MSSA 1 t148 I ST1434 / CC72
12 Младенец MRSA 1 t322 II IV ST5 / CC5 90 366 STR str F luk-DE, aur
Mother MSSA 3 t166 CC luk-DE, aur, tsst-1, eta 1
Мать MSSA III III ST30 / CC30 B aur, cna, tsst-1
367 ST34 / CC30 903 90 ER367 ST5 / CC3 903 90 367 t136660367 aur3 903-1, cna, cna3 CC 0367 ER CC 903 903 903 903 , cna, tsst-1 0 , cna 0 B
. . MRSA / . № . Молекулярное типирование . Устойчивость к противомикробным препаратам . Факторы вирулентности .
Корпус . Происхождение . MSSA . штаммов . СПА тип . агр . SCC МЭК . MLST / CC и . Фенотип b . Генотип . IEC тип c . Другие гены d .
A. Случаи потенциальной передачи S. aureus от матери к ребенку
1 M Инфант t322 II IV ST5 / CC5 ERY, CLI, GEN, TOB erm (C), aac (6 ) -Ie-aph (2 ), муравей (4 ) -Ia F luk-DE, aur
Мать MRSA 7 t322 II CC ERY, CLI, GEN, TOB, KAN erm (C), lnu (A), aac (6 ) -Ie-aph (2 ), ant (4 ) -Ia, aph (3 ) -III3 F luk-DE, aur 901 15 2 , эта 2
Мать MSSA 1 t136 III ST34 / CC30 luk-DE, aur, tsst-1
2 младенец MRSA 5 t322 II IVOB erm (C), aac (6 ) -Ie-aph (2 ), ant (4 ) -Ia F luk-DE, aur
Материнская часть MRSA 1 t322 II IV ST5 / CC5 ERY, CLI, GEN, TOB3, TOB (CAN) A), aac (6 ) -Ie-aph (2 ), муравей (4 ) -Ia F luk-DE, aur, eta
Младенец MSSA 1 t ST34 / CC30 E aur, tsst-1
3 младенец MSSA ST45 / CC45 B aur, cna
для младенцев MSSA 3 CC — E luk-DE, eta, aur, tsst-1
Mother MSSA 1 III ST34 / CC30 E luk-DE, eta, aur, tsst-1
MSSA 1 t021 III ST1869 / CC30 MSSA 1 t021 III ST1869 / CC30 aur, cna 903, tsst 9030 -3Случаи NON S. aureus передача матери ребенку
5 Младенец MRSA II ST5 / CC5 ERY, CLI, GEN, TOB erm (C), aac (6 ) -Ie-aph (2 ), ant (4 ) -Ia F luk-DE, aur
6 Младенец MSSA 1 t015 I ST str F luk-DE, aur, cna
Материнский MSSA 1 t021 III aur, cna, tsst-1
7 Младенец MRSA 1 t002 II ST II CC GEN, TOB, STR, FUS, CIP msrA, mrsB, aac (6 ) -Ie-aph (2 ), ant (4 ) -Ia, str, fus (C) E luk-DE, aur
8 Младенцы MSSA 1 t012 III — 903 903 CC — A luk-DE, aur, cna, tsst-1
младенец MSSA 1 t5204 CC К luk-DE, aur
9 для младенцев MSSA 1 t122 ​​ III ST30 / CC30 STR
10 для младенцев MSSA 1 t10664 I ST8 / CC8
11 Младенцы MSSA 1 t148 I ST1434 / CC72
12 Младенец MRSA 1 t322 II IV ST5 / CC5 90 366 STR str F luk-DE, aur
Mother MSSA 3 t166 CC luk-DE, aur, tsst-1, eta 1
Мать MSSA III III ST30 / CC30 B aur, cna, tsst-1
Таблица 1.

Основные характеристики штаммов S. aureus , полученных от матерей и младенцев в этом исследовании.

367 ST34 / CC30 903 90 ER367 ST5 / CC3 903 90 367 t136660367 aur3 903-1, cna, cna3 CC 0367 ER CC 903 903 903 903 , cna, tsst-1 0 , cna 0 B
. . MRSA / . № . Молекулярное типирование . Устойчивость к противомикробным препаратам . Факторы вирулентности .
Корпус . Происхождение . MSSA . штаммов . СПА тип . агр . SCC МЭК . MLST / CC и . Фенотип b . Генотип . IEC тип c . Другие гены d .
A. Случаи потенциальной передачи S. aureus от матери к ребенку
1 M Инфант t322 II IV ST5 / CC5 ERY, CLI, GEN, TOB erm (C), aac (6 ) -Ie-aph (2 ), муравей (4 ) -Ia F luk-DE, aur
Мать MRSA 7 t322 II CC ERY, CLI, GEN, TOB, KAN erm (C), lnu (A), aac (6 ) -Ie-aph (2 ), ant (4 ) -Ia, aph (3 ) -III3 F luk-DE, aur 901 15 2 , эта 2
Мать MSSA 1 t136 III ST34 / CC30 luk-DE, aur, tsst-1
2 младенец MRSA 5 t322 II IVOB erm (C), aac (6 ) -Ie-aph (2 ), ant (4 ) -Ia F luk-DE, aur
Материнская часть MRSA 1 t322 II IV ST5 / CC5 ERY, CLI, GEN, TOB3, TOB (CAN) A), aac (6 ) -Ie-aph (2 ), муравей (4 ) -Ia F luk-DE, aur, eta
Младенец MSSA 1 t ST34 / CC30 E aur, tsst-1
3 младенец MSSA ST45 / CC45 B aur, cna
для младенцев MSSA 3 CC — E luk-DE, eta, aur, tsst-1
Mother MSSA 1 III ST34 / CC30 E luk-DE, eta, aur, tsst-1
MSSA 1 t021 III ST1869 / CC30 MSSA 1 t021 III ST1869 / CC30 aur, cna 903, tsst 9030 -3Случаи NON S. aureus передача матери ребенку
5 Младенец MRSA II ST5 / CC5 ERY, CLI, GEN, TOB erm (C), aac (6 ) -Ie-aph (2 ), ant (4 ) -Ia F luk-DE, aur
6 Младенец MSSA 1 t015 I ST str F luk-DE, aur, cna
Материнский MSSA 1 t021 III aur, cna, tsst-1
7 Младенец MRSA 1 t002 II ST II CC GEN, TOB, STR, FUS, CIP msrA, mrsB, aac (6 ) -Ie-aph (2 ), ant (4 ) -Ia, str, fus (C) E luk-DE, aur
8 Младенцы MSSA 1 t012 III — 903 903 CC — A luk-DE, aur, cna, tsst-1
младенец MSSA 1 t5204 CC К luk-DE, aur
9 для младенцев MSSA 1 t122 ​​ III ST30 / CC30 STR
10 для младенцев MSSA 1 t10664 I ST8 / CC8
11 Младенцы MSSA 1 t148 I ST1434 / CC72
12 Младенец MRSA 1 t322 II IV ST5 / CC5 90 366 STR str F luk-DE, aur
Mother MSSA 3 t166 CC luk-DE, aur, tsst-1, eta 1
Мать MSSA III III ST30 / CC30 B aur, cna, tsst-1
367 ST34 / CC30 903 90 ER367 ST5 / CC3 903 90 367 t136660367 aur3 903-1, cna, cna3 CC 0367 ER CC 903 903 903 903 , cna, tsst-1 0 , cna 0 B
. . MRSA / . № . Молекулярное типирование . Устойчивость к противомикробным препаратам . Факторы вирулентности .
Корпус . Происхождение . MSSA . штаммов . СПА тип . агр . SCC МЭК . MLST / CC и . Фенотип b . Генотип . IEC тип c . Другие гены d .
A. Случаи потенциальной передачи S. aureus от матери к ребенку
1 M Инфант t322 II IV ST5 / CC5 ERY, CLI, GEN, TOB erm (C), aac (6 ) -Ie-aph (2 ), муравей (4 ) -Ia F luk-DE, aur
Мать MRSA 7 t322 II CC ERY, CLI, GEN, TOB, KAN erm (C), lnu (A), aac (6 ) -Ie-aph (2 ), ant (4 ) -Ia, aph (3 ) -III3 F luk-DE, aur 901 15 2 , эта 2
Мать MSSA 1 t136 III ST34 / CC30 luk-DE, aur, tsst-1
2 младенец MRSA 5 t322 II IVOB erm (C), aac (6 ) -Ie-aph (2 ), ant (4 ) -Ia F luk-DE, aur
Материнская часть MRSA 1 t322 II IV ST5 / CC5 ERY, CLI, GEN, TOB3, TOB (CAN) A), aac (6 ) -Ie-aph (2 ), муравей (4 ) -Ia F luk-DE, aur, eta
Младенец MSSA 1 t ST34 / CC30 E aur, tsst-1
3 младенец MSSA ST45 / CC45 B aur, cna
для младенцев MSSA 3 CC — E luk-DE, eta, aur, tsst-1
Mother MSSA 1 III ST34 / CC30 E luk-DE, eta, aur, tsst-1
MSSA 1 t021 III ST1869 / CC30 MSSA 1 t021 III ST1869 / CC30 aur, cna 903, tsst 9030 -3Случаи NON S. aureus передача матери ребенку
5 Младенец MRSA II ST5 / CC5 ERY, CLI, GEN, TOB erm (C), aac (6 ) -Ie-aph (2 ), ant (4 ) -Ia F luk-DE, aur
6 Младенец MSSA 1 t015 I ST str F luk-DE, aur, cna
Материнский MSSA 1 t021 III aur, cna, tsst-1
7 Младенец MRSA 1 t002 II ST II CC GEN, TOB, STR, FUS, CIP msrA, mrsB, aac (6 ) -Ie-aph (2 ), ant (4 ) -Ia, str, fus (C) E luk-DE, aur
8 Младенцы MSSA 1 t012 III — 903 903 CC — A luk-DE, aur, cna, tsst-1
младенец MSSA 1 t5204 CC К luk-DE, aur
9 для младенцев MSSA 1 t122 ​​ III ST30 / CC30 STR
10 для младенцев MSSA 1 t10664 I ST8 / CC8
11 Младенцы MSSA 1 t148 I ST1434 / CC72
12 Младенец MRSA 1 t322 II IV ST5 / CC5 90 366 STR str F luk-DE, aur
Мать MSSA 3 t163 CC luk-DE, aur, tsst-1, eta 1
Мать MSSA III III ST30 / CC30 B aur, cna, tsst-1
Таблица 2.

Staphylococcus aureus штаммов, выделенных из 12 случаев от матери к ребенку и потенциального переноса от матери к ребенку в четырех случаях, по оценке с помощью типирования PFGE -spa -MLST.

906 903 903 903 903000 . 906 903 903 903 903 911.

Staphylococcus aureus штаммов, выделенных из 12 случаев от матери к ребенку и потенциального переноса от матери к ребенку в четырех случаях, по оценке с помощью типирования PFGE -spa -MLST.

. Изоляты детских фекалий . . Оценка PFGE сходных молекулярных линий в фекалиях и молоке .
Ящики . 7 дней . 14 дней . 35 дней . молочные изоляты . Штаммы . тип спа . MLST . Шаблоны PFGE a .
Корпус 1 C5515 C6429 до C6436 C5515, C6429, C6433, C6435 t322367 ST5 C5524, C5525 C5526, C5527 C6438 C5522, C5524, C5526, C6438 t322 ST5 A
C, C, C5535, C5536, C5537 C6437 C5520, C5537, C6437 t136 ST34 B
Корпус 4 C550 C550 ST1869 C
Корпус 5 C5513 C5514
Чехол 6 C5516 C5517
Корпус 8 C5511, C5512
9066 903 906
Корпус 10 C5530
Корпус 11 903 0366
Корпус 12 C5533 C5532, C5534, C6439, C6440
Изоляты детских фекалий . . Оценка PFGE сходных молекулярных линий в фекалиях и молоке .
Ящики . 7 дней . 14 дней . 35 дней . молочные изоляты . Штаммы . тип спа . MLST . Шаблоны PFGE a .
Корпус 1 C5515 C6429 до C6436 C5515, C6429, C6433, C6435 t322367 ST5 C5524, C5525 C5526, C5527 C6438 C5522, C5524, C5526, C6438 t322 ST5 A
C, C, C5535, C5536, C5537 C6437 C5520, C5537, C6437 t136 ST34 B
Корпус 4 C550 C550 ST1869 C
Корпус 5 C5513 C5514
Чехол 6 C5516 C5517
Корпус 8 C5511, C5512
9066 903 906
Корпус 10 C5530
Корпус 11 903 0366
Корпус 12 C5533 C5532, C5534, C6439, C6440
906 903 903 903 903000 . 906 903 903 903 903 Тип изоляторов

Всего 41 S.aureus были выделены в этом исследовании от матерей и младенцев, и 18 из них были признаны MRSA, поскольку они показали устойчивость к оксациллину и цефокситину и были положительными по гену mec A. Эти изоляты MRSA были получены от 2 из 21 протестированной матери (9,6%) и от 5 из 21 ребенка (23,8%). Остальные 23 изолята были чувствительны к оксациллину и цефокситину, не имели гена mecA и рассматривались как MSSA.

Результаты полной характеристики всех изолятов MRSA и MSSA, выделенных в этом исследовании, показаны в таблице 1.Было обнаружено двенадцать различных типов spa (t002, t012, t015, t021, t122, t136, t148, t166, t322, t440, t5204 и новый тип spa , зарегистрированный как t10664 в Ridom Spa Server), и большинство Частые agr аллотипов были II и III.

Изоляты Staphylococcus aureus принадлежали к восьми различным типам последовательностей (ST5, ST8, ST15, ST30, ST34, ST45, ST1434 и ST1869), включенным в шесть различных клональных комплексов (CC5, CC8, CC15, CC30, CC45 и CC72).Изоляты MRSA были типированы как ST5 ( spa -322 и spa -t002), отнесены к клональному комплексу CC5 и типизированы как SCC mec IV. Другие ST, идентифицированные среди MSSA, были (приписаны ST / CC): ST8 / CC8, ST15 / CC15, ST30-ST34-ST1869 / CC30, ST45 / CC45 и ST1434 / CC72. Преобладающими клональными комплексами были CC5 и CC30, они составляли 43,9 и 36,6% от общего числа изолятов (таблица 1).

Анализ PFGE для проверки потенциальной передачи от матери ребенку

Передача S. aureus

spa тип S.aureus от матерей и младенцев предполагают потенциальную передачу инфекции от матери к ребенку в четырех парах мать-младенец (случаи 1–4). Чтобы прояснить этот вопрос, сравнивали профили PFGE изолятов с аналогичными типами spa . Было подтверждено совместное использование клона MRSA t322 / ST5 / CC5-PFGE-A между матерями и младенцами в случаях 1 и 2. Точно так же клоны MSSA t136 / ST34 / CC30-PFGE-B и MSSA t021 / ST1869 / CC30-PFGE-C были общими для случая 3 и случая 4 соответственно (таблица 2, рис.1). Между изолятами от матерей и младенцев из остальных восьми случаев сходства в типах spa не наблюдалось.

Рисунок 1. Анализ

PFGE- SmaI изолятов S. aureus в случаях потенциальной передачи от матери ребенку. Строки 1-8 показывают штаммы матери и ребенка, принадлежащие к случаям 1 и 2 с профилем PFGE A. Строки 9-11: штаммы матери и ребенка, принадлежащие к случаю 3 с профилем PFGE B. Строки 12 и 13: штаммы матери и ребенка. младенец из случая 4 с профилем PFGE C.Сокращения. В: младенец; Мо: мама.

Рис. 1. Анализ

PFGE- SmaI изолятов S. aureus в случаях потенциальной передачи от матери ребенку. Строки 1-8 показывают штаммы матери и ребенка, принадлежащие к случаям 1 и 2 с профилем PFGE A. Строки 9-11: штаммы матери и ребенка, принадлежащие к случаю 3 с профилем PFGE B. Строки 12 и 13: штаммы матери и ребенка. младенец из случая 4 с профилем PFGE C. Сокращения. В: младенец; Мо: мама.

Тестирование чувствительности и выявление генов устойчивости к противомикробным препаратам

Изоляты MSSA показали чувствительность к большинству протестированных противомикробных препаратов, за исключением двух изолятов, отнесенных к линиям CC30 и CC45, которые проявляли устойчивость к стрептомицину и содержали ген str . С другой стороны, изоляты MRSA-CC5-t322 обладали фенотипом множественной лекарственной устойчивости с устойчивостью к эритромицину, клиндамицину, гентамицину, тобрамицину и канамицину в дополнение к устойчивости к метициллину; эти изоляты несли erm (C) , aac (6 ) -Ie-aph (2 ), ant (4 ) -Ia и aph (3 ) -III , и два из них также несли ген lnu (A) .В дополнение к вышеупомянутым противомикробным препаратам один изолят, типизированный как t002-ST5 / CC5, показал устойчивость к ципрофлоксацину, стрептомицину и фузидовой кислоте, содержащий гены str и fus (C) (таблица 1).

Гены вирулентности

Различное количество факторов вирулентности было обнаружено среди 41 изолята S. aureus (таблица 1). Интересно, что 15 изолятов MSSA, принадлежащих к клональному комплексу CC30, содержали ген токсина tsst-1 (36.6%), тогда как восемь изолятов (три MRSA-CC5 и пять MSSA-CC30) несли ген эксфолиативного токсина A ( eta ). Пять из протестированных младенцев содержали в своих фекалиях TSST-продуцирующие штаммов S. aureus клонального комплекса CC30 (в двух случаях он также был обнаружен в молоке их матерей). генов lukD – lukE были обнаружены у 30 изолятов (73,2%), из них 18 MRSA и 12 MSSA. Всего 35 изолятов несли ген aur , и 12 были положительными по гену cna (принадлежащему в основном к клональным комплексам CC30 и CC45).Все изоляты были отрицательными на присутствие генов lukF / lukS- PV, lukM, bap, etb или etd (таблица 1).

Анализ генов IEC

Только шесть изолятов S. aureus MSSA-CC30 из 41 изученных S. aureus не содержали гены IEC. Среди остальных изолятов были получены следующие типы IEC (тип IEC / CC): A / CC30, B / CC30-CC45-CC8-CC72, C / CC15, E / CC30-CC5 и F / CC5-CC45. Типы IEC D и G не были обнаружены ни в одном из изолятов (таблица 1).

Персистентность

клонов S. aureus

Один и тот же клон S. aureus был выделен от одного и того же младенца, по крайней мере, в два разных периода отбора проб, в случаях 2 и 5, что указывает на клональную персистентность. У остальных младенцев S. aureus было выделено только в одной из трех проб фекалий, полученных в течение исследуемого периода (35 дней).

ОБСУЖДЕНИЕ

Высокая частота фекального носительства S. aureus (12 из 21 протестированного, 57%) была обнаружена среди здоровых младенцев в этом исследовании в течение первых 35 дней их жизни.Штаммы MRSA были обнаружены у 5 из этих 12 младенцев, что составляет 23,8% от общего числа протестированных младенцев. Ни у одного из MRSA-положительных младенцев, выявленных в этом исследовании, не развилась инфекция MRSA в течение следующих 6 лет жизни (данные не показаны). Предыдущие исследования показали, что частота фекального носительства S. aureus составляет от 6 до 65% у здоровых младенцев (Björkstén et al. , 2001; Dominguez, Zarazaga and Torres 2002; Lindberg et al. 2004) и заметно более низкое MRSA. Показатели носительства здоровых детей и людей на момент госпитализации (0–5%) (Dominguez, Zarazaga and Torres, 2002; Jernigan et al., 2003), хотя зарегистрированный процент увеличился среди госпитализированных пациентов (24%) (Klotz et al. , 2005). Кроме того, предыдущее исследование показало, что колонизация кишечника младенца S. aureus была высокой в ​​течение первого месяца жизни, но уменьшалась в последующие недели (Björkstén et al. , 2001). В нашем исследовании самая высокая распространенность у младенцев была обнаружена через 35 дней после рождения. Что касается образцов молока протестированных матерей, два из 21 (9,6%) содержали MRSA, что также свидетельствует о высоком уровне носительства.

Обращает на себя внимание генетическое разнообразие видов spa , выявленных в нашем исследовании (12 различных типов spa , включая новый). Более одной трети штаммов показали spa типов, которые можно отнести к клональному комплексу CC30, линии, которая, по-видимому, успешно колонизирует людей и показала большую повсеместность (Deurenberg et al. , 2009). Этот клональный комплекс, по-видимому, связан с внебольничными инфекциями 9 . Наши штаммы MSSA CC30 показали небольшое количество генов устойчивости к противомикробным препаратам, но замечательный профиль генов вирулентности; Фактически, более 90% штаммов MSSA-CC30 содержат ген токсина синдрома токсического шока ( tsst-1 ).Эта связь между MSSA-CC30 и tsst-1 наблюдалась в других исследованиях (Deurenberg et al. 2009), но в меньших процентах, чем в нашем исследовании (Mégevand et al. , 2010; Lozano et al. , 2011). Ранняя кишечная колонизация изолятами S. aureus , продуцирующими токсины с суперантигенной функцией (TSST-1), по-видимому, способствует системным ответам IgA у новорожденных, которые отрицательно коррелируют с развитием аллергии (Lundell et al. , 2009).

Около одной трети из штаммов S. aureus были типированы как MRSA-t322-ST5-CC5, с agr -II и SCC mec IV. Эти штаммы показали типичный профиль HA-MRSA (Schaumburg et al. , 2012), продемонстрировали множественную лекарственную устойчивость (макролиды, линкозамины и аминоглюкозиды) и различные гены устойчивости к противомикробным препаратам, включая erm (C), aac (6 ). -Ie-aph (2 ), ant (4 ) -Ia и aph (3 ) -III, а также lnu (A) в двух из них .Обнаружение IEC типа F или E во всех этих штаммах дополнительно подтверждает их профиль HA-MRSA (Benito et al. , 2013).

Интересно, что в одном образце фекалий был обнаружен один штамм MSSA t148 / ST1434-CC72; эта клада S aureus ранее была связана со штаммами CA-MRSA, обнаруженными в азиатских странах (Harastani, Araj and Tokajian, 2014), но в нашем случае у штамма CC72 отсутствовали детерминанты устойчивости к метициллину. Точно так же штамм MSSA, типизированный как t10664 / ST8-CC8, лишен генов токсина PVL и, следовательно, не показывает типичный профиль CA-MRSA (Uhlemann et al., 2014).

Все наши штаммы S. aureus были PVL-отрицательными, а luk-M отрицательными. Более того, ни один из них не содержал ген bap , кодирующий ассоциированный с биопленкой белок (Cucarella et al. , 2001). Ранее предполагалось, что распространенность гена bap среди штаммов S. aureus очень низкая (Vautor et al. , 2008). Кроме того, восемь штаммов (19,5%) несли ген eta , кодирующий эксфолиативный токсин А, и они были отнесены к клональным комплексам CC5 и CC30.Сообщалось, что эти штаммы вызывают стафилококковый синдром ошпаренной кожи и импетиго (Masiuk et al. , 2010). Кроме того, 73,2% наших штаммов несли генов lukD – lukE , которые кодируют лейкотоксин, более распространенный в HA-MRSA (Uhlemann et al. , 2014). Двенадцать штаммов CC8, CC30 или CC45 содержат ген cna , кодирующий коллаген-связывающий белок, в основном связанный с приобретенным сообществом MRSA или MSSA (Deurenberg et al. , 2009).Анализ

PFGE выявил четыре случая возможной передачи S. aureus от матери ребенку через грудное молоко (рис. 1). Интересно, что один и тот же клон был обнаружен в образцах молока и фекалий младенцев в двух разных случаях (случаи 1 и 2). Некоторые авторы предполагают, что колонизированная кожа родителей является источником большей части S. aureus , которые колонизируют младенцев или младенческую микробиоту кишечника (Gries et al. , 2009), в то время как другие предполагают, что сотрудники родильного отделения могут быть еще одним источником заражения. передача между младенцами и матерями (Matussek et al., 2007). Кроме того, есть исследования, которые постулируют, что увеличение частоты появления S. aureus на коже госпитализированных пациентов может быть потенциальным источником, способствующим внутрибольничной передаче (Bhalla, Aron and Donskey 2007). В нашем исследовании клон t322-CC5, который был обнаружен в двух случаях потенциальной передачи вируса от матери ребенку, мог иметь больничное происхождение, поскольку он обладал типичными характеристиками HA-MRSA. Младенцы случаев 1 и 2 родились в одной больнице, но с разницей в 6 месяцев.

Грудное молоко представляет собой сложную биологическую жидкость, специфичную для каждого вида, адаптированную для удовлетворения пищевых потребностей быстро растущего младенца; Кроме того, он обучает иммунную систему младенца и обеспечивает определенную степень защиты от патогенов. Эти эффекты отражают синергетическое действие многих биоактивных молекул (Ballard et al. , 2013). Кроме того, недавние исследования показали, что грудное молоко является постоянным источником бактерий для кишечника младенца, а исследования как в культуре, так и в микробиоме показали, что стафилококки, в основном ЦНС, составляют доминирующие бактерии в этой биологической жидкости (Fernández et al. ., 2013). Интересно, что и S. aureus , и S. epidermidis относятся к микроорганизмам с самой высокой способностью метаболизировать олигосахариды грудного молока (Hunt et al. , 2012). Различные исследования показывают, что некоторые бактерии, присутствующие в кишечнике матери, включая стафилококки, могут достигать молочной железы на поздних сроках беременности и кормления грудью через механизм, включающий моноциты кишечника (Martin et al. , 2004; Pérez et al. , 2007) .Ранняя колонизация кишечника изолятами S. aureus , включая токсигенные изоляты, влияет на уровень растворимого CD14 или IgA, циркулирующих в плазме новорожденных, что влияет на развитие иммунной системы и риск развития аллергии (Lundell et al. , 2007, 2009).

Присутствие S. epidermidis в кишечнике младенца, по-видимому, является отличительной чертой фекалий младенцев, находящихся на грудном вскармливании, по сравнению с фекалиями младенцев на искусственном вскармливании (Borderon et al., 1996; Adlerberth et al. , 2006; Хименес и др. , 2008). В этом контексте обильное присутствие этого вида во всех образцах молока и фекалий, протестированных в этом исследовании (данные не показаны) (Jiménez et al. , 2008), может объяснить, по крайней мере частично, почему все младенцы оставались здоровыми на протяжении всего периода. период обучения, а также в последующие годы. Действительно, ЦНС, обеспечиваемая грудным молоком, может быть особенно полезной для уменьшения приобретения нежелательных патогенов младенцами, находящимися в условиях больницы.Было высказано предположение, что S. epidermidis и другие ЦНС могут выполнять пробиотическую функцию, предотвращая колонизацию хозяина более серьезными патогенами, такими как S. aureus (Otto et al. , 2009). Фактически, некоторые штаммов S. epidermidis , которые ингибируют in vivo колонизацию S. aureus , были постулированы в качестве будущей стратегии по искоренению такого патогена с поверхностей слизистых оболочек (Iwase et al. , 2010; Park, Iwase и Лю 2011).

В заключение, высокий уровень фекального носительства S. aureus наблюдался среди здоровых младенцев в этом исследовании, включая штаммы MRSA. Было выявлено четыре случая передачи S. aureus от матери ребенку через грудное молоко, что подчеркивает способность этого микроорганизма передаваться этим путем и закрепляться в кишечной микробиоте младенца. В связи с этим важно отметить, что необходимы дополнительные исследования, чтобы понять последствия или возможную роль этой микробной передачи от матери к ребенку.Дальнейшие исследования должны быть сосредоточены на влиянии этой ранней кишечной колонизации S. aureus у младенцев (включая колонизацию изолятами MRSA) на правильное развитие их иммунной системы, эволюцию колонизации S. aureus в течение первых лет жизни младенца и влияние на создание других бактерий кишечного микробиома.

Мы выражаем признательность за исправление текста, выполненное Ф. Руис-Ларреа.

ФИНАНСИРОВАНИЕ

Эта работа была частично поддержана проектом SAF2012–35474 Министерства экономики и конкуренции Испании и Европейского фонда де Десарролло (FEDER).Даниэль Бенито имеет докторскую стипендию FPI от Министерства экономики и конкуренции Испании, а К. Лозано финансируется проектом SAF2012–35474.

Конфликт интересов . Не существует в связи с этой рукописью.

ССЫЛКИ

Адлерберт

I

Линдберг

E

Aberg

N

et al.

Пониженная энтеробактериальная и повышенная стафилококковая колонизация кишечника младенцев: влияние гигиенического образа жизни

Педиатр Res

2006

59

96

101

Баллард

О

Морроу

AL

Состав грудного молока: нутриенты и биологически активные факторы

Pediatr Clin N Am

2013

60

49

74

Бенито

D

Lozano

C

Gómez-Sanz

E

et al.

Обнаружение метициллин-чувствительных штаммов Staphylococcus aureus ST398 и ST133 в кишечной микробиоте здоровых людей в Испании

Микроб Экол

2013

66

105

11

Бхалла

А

Арон

ДЦ

Донски

CJ

Staphylococcus aureus кишечная колонизация связана с повышенной частотой S.aureus на коже госпитализированных пациентов

BMC Infect Dis

2007

7

105

Björkstén

B

Сепп

E

Julge

K

et al.

Развитие аллергии и микрофлора кишечника на первом году жизни

J Allergy Clin Immunol

2001

108

516

20

Бордерон

JC

Lionnet

C

Rondeau

C

et al.

Текущие аспекты фекальной флоры новорожденного без антибиотикотерапии в течение первых 7 дней жизни: Enterobacteriaceae , энтерококки, стафилококки

Патол Биол

1996

44

416

22

Буржуа-Николаос

N

Люцет

JC

Daubié

C

et al.

Колонизация влагалища матери Staphylococcus aureus и приобретение новорожденного при родах

Paediatr Perinat Ep

2010

24

488

91

Чо

Я

Blaser

MJ

Микробиом человека: на стыке здоровья и болезней

Nat Rev Genet

2012

13

260

70

Институт стандартов клинической лаборатории

Стандарты эффективности тестирования чувствительности к противомикробным препаратам: Двадцать два информационных приложения M100-S24

2014

Уэйн, Пенсильвания, США

CLSI

Cucarella

C

Солано

С

Valle

J

et al.

Bap, поверхностный белок Staphylococcus aureus , участвующий в образовании биопленок

Дж Бактериол

2001

183

2888

96

Delgado

S

Гарсия

P

Фернандес

L

et al.

Характеристика штаммов Staphylococcus aureus , вызывающих мастит у человека и крупного рогатого скота

FEMS Immunol Med Микрофон

2011

62

225

35

Deurenberg

RH

Rijnders

MI

Себастьян

S

et al.

Staphylococcus aureus клон-специфические маркеры коллаген адгезин и токсин 1 синдрома токсического шока различают мультилокусные последовательности клональных комплексов в пределах spa клональных комплексов

Диагностика Micr Infec Dis

2009

65

116

122

Домингес

E

Саразага

M

Торрес

К

Устойчивость к антибиотикам в изолятах стафилококка , полученных из фекалий здоровых детей

J Clin Microbiol

2002

40

2638

41

Европейский комитет по тестированию чувствительности к противомикробным препаратам (EUCAST)

Таблицы контрольных точек для интерпретации MIC и диаметров зон Версия 4.0 , январь 2014 г.

Европейское общество клинической микробиологии и инфекционных заболеваний (ESCMID)

Фернандес

L

Langa

S

Мартин

V

et al.

Микробиота грудного молока: происхождение и потенциальная роль в здоровье и болезнях

Pharmacol Res

2013

69

1

10

Gries

DM

Земзарс

TF

Gibson

KA

et al.

Пилотное исследование по оценке частоты носительства и путей заражения Staphylococcus aureus здоровыми младенцами

Am J Infect Control

2009

37

598

600

Harastani

HH

Арай

GF

Токаджян

ST

Молекулярные характеристики золотистого стафилококка , выделенного из крупной больницы в Ливане

Int J Infect Dis

2014

19

33

8

Хармсен

D

Клаус

H

Witte

W

et al.

Типирование метициллин-устойчивого Staphylococcus aureus в условиях университетской больницы с использованием нового программного обеспечения для spa повторное определение и управление базой данных

J Clin Microbiol

2003

41

5442

8

Hunt

км

Preuss

J

Nissan

C

et al.

Олигосахариды грудного молока способствуют росту стафилококков

Appl Environ Microb

2012

78

4763

70

Ивасе

Т

Уэхара

Y

Синдзи

H

и др.

Staphylococcus epidermidis sp подавляет Staphylococcus aureus образование биопленок и колонизацию носа

Природа

2010

465

346

9

Жарро

S

Mougel

C

Thioulouse

J

et al.

Взаимосвязь между Staphylococcus aureus генетических фоновых факторов вирулентности, agr групп (аллелей) и человеческими болезнями

Заражение иммунной

2002

70

631

41

Джерниган

JA

Pullen

AL

Цветы

L

et al.

Распространенность и факторы риска колонизации метициллин-резистентным Staphylococcus aureus на момент госпитализации

Инфекция Cont Hosp Ep

2003

24

409

14

Хименес

E

Delgado

S

Мальдонадо

A

et al.

Staphylococcus epidermidis : отличительный признак фекальной микробиоты грудных детей

BMC Microbiol

2008

8

143

Хименес-Трюке

N

Тедески

S

Saye

EJ

et al.

Взаимоотношения между матерью и новорожденным Staphylococcus aureus колонизация

Педиатрия

2012

129

1252

9

Клотц

M

Циммерманн

S

Оппер

S

et al.

Возможный риск повторной колонизации метициллин-резистентным Staphylococcus aureus (MRSA) через фекальную передачу

Инт Дж. Хиг Энвир Хил

2005

208

401

5

Лешем

E

Мааян-Мецгер

A

Rahav

G

et al.

Передача Staphylococcus aureus от матери новорожденным

Педиатр Infect Dis J

2012

31

360

3

Линдберг

E

Адлерберт

I

Hesselmar

B

et al.

Высокая скорость передачи Staphylococcus aureus с кожи родителей на флору кишечника младенца

J Clin Microbiol

2004

42

530

4

Lozano

C

Gómez-Sanz

E

Benito

D

et al.

Staphylococcus aureus носительство через нос, признаки вирулентности, механизмы устойчивости к антибиотикам и генетические линии у здоровых людей в Испании, с обнаружением штаммов CC398 и CC97

Int J Med Microbiol

2011

301

500

5

Lundell

AC

Адлерберт

Линдберг

E

et al.

Повышенные уровни циркулирующего растворимого CD14, но не CD83 у младенцев, связаны с ранней кишечной колонизацией Staphylococcus aureus

Clin Exp Allergy

2007

37

62

71

Lundell

AC

Хессельмар

B

Nordström

I

et al.

Высокие уровни циркулирующего иммуноглобулина А у младенцев связаны с кишечным токсигенным Staphylococcus aureus и меньшей частотой экземы

Clin Exp Allergy

2009

39

662

70

Мартин

Р

Langa

S

Reviriego

C

et al.

Комменсальная микрофлора грудного молока: новые перспективы пищевой бактериотерапии и пробиотиков

Trends Food Sci Tech

2004

15

121

7

Масюк

H

Копрон

К

Grumann

D

et al.

Ассоциация рецидивирующего фурункулеза с лейкоцидином Пантон-валентина и генетическим фоном Staphylococcus aureus

J Clin Microbiol

2010

48

1527

35

Матуссек

А

Taipalensuu

J

Einemo

IM

et al.

Передача Staphylococcus aureus от сотрудников родильного отделения новорожденным, выявленная через spa , набрав

Am J Infect Control

2007

35

122

5

Mégevand

C

Жерве

А

Heininger

U

et al.

Молекулярная эпидемиология колонизации носа метициллин-чувствительными Staphylococcus aureus у детей в Швейцарии

Clin Microbiol Infec

2010

16

1414

20

Мурчан

S

Кауфманн

ME

Deplano

A

et al.

Гармонизация протоколов гель-электрофореза в импульсном поле для эпидемиологического типирования штаммов метициллин-резистентных Staphylococcus aureus: единый подход, разработанный консенсусом в 10 европейских лабораториях, и его применение для отслеживания распространения родственных штаммов

J Clin Microbiol

2003

41

1574

85

Отто

М.

Staphylococcus epidermidis ; «случайный» патоген

Nat Rev Microbiol

2009

7

555

67

Парк

Б

Ивасе

Т

Лю

GY

Интраназальное введение S. epidermidis предотвращает колонизацию метициллин-резистентным Staphylococcus aureus у мышей

Plos One

2011

6 (10)

e25880

Перес

PF

Доре

Дж

Leclerc

M

et al.

Бактериальный импринтинг иммунной системы новорожденных: уроки материнских клеток?

Педиатрия

2007

119

e724

32

Сабат

А

Kosowska

K

Poulsen

K

et al.

Две аллельные формы гена ауреолизина ( aur ) в пределах Staphylococcus aureus

Заражение иммунной

2000

68

973

6

Шаумбург

F

Кёк

R

Mellmann

A

et al.

Динамика численности метициллин-устойчивых изолятов Staphylococcus aureus в Германии за 6 лет

J Clin Microbiol

2012

50

3186

92

Магазин

B

Mathema

B

Alcabes

P

et al.

Распространенность agr групп специфичности среди штаммов Staphylococcus aureus , колонизирующих детей и их опекунов

J Clin Microbiol

2003

41

456

9

Сим

К

Пауэлл

E

Shaw

AG

et al.

Микробиота желудочно-кишечного тракта новорожденных: основа здоровья будущего?

Arch Dis Child-Fetal

2013

98

362

64

Удо

EE

Аль-Свейл

N

Норонья

BC

Хромосомная локализация гена mupA в Staphylococcus aureus , экспрессирующем высокий уровень устойчивости к мупироцину

J Антимикробный Chemoth

2003

51

1283

6

Uhlemann

AC

Отто

M

Lowy

FD

et al.

Развитие метициллин-резистентности, связанной с населением и здравоохранением Staphylococcus aureus

Заразить Genet Evol

2014

21

563

74

Ван Белкум

A

Меллес

ДЦ

Nouwen

J

et al.

Коэволюционные аспекты колонизации человека и инфицирования Staphylococcus aureus

Заразить Genet Evol

2009

9

32

47

Фургон Wamel

WJ

Rooijakkers

SH

Ruyken

M

et al.

Модуляторы врожденного иммунитета, стафилококковый ингибитор комплемента и белок, ингибирующий хемотаксис Staphylococcus aureus , расположены на бета-гемолизин-превращающих бактериофагах

Дж Бактериол

2006

188

1310

5

Vautor

E

Abadie

G

Pont

A

et al.

Оценка присутствия гена bap в изолятах Staphylococcus aureus , выделенных от людей и животных

Vet Microbiol

2008

127

407

11

Витте

Вт

Стромменгер

B

Stanek

C

et al.

Метициллин-устойчивый Staphylococcus aureus ST398 у людей и животных, Центральная Европа

Emerg Infect Dis

2007

13

255

8

Распространенность, клональность и патогенность изолятов Staphylococcus epidermidis в кале новорожденных

  • 1.

    Aas JA, Paster BJ, Stokes LN, Olsen I., Dewhirst FE (2005) Определение нормальной бактериальной флоры полости рта.J Clin Microbiol 43: 5721–5732

    Статья PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 2.

    Widerström M (2016) Значение Staphylococcus epidermidis для инфекций, связанных с оказанием медицинской помощи, от контаминанта до клинически значимого патогена: это тревожный сигнал! J Clin Microbiol 54 (7): 1679–1681

    Статья PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 3.

    Cortese F, Scicchitano P, Gesualdo M et al (2016) Ранние и поздние инфекции у новорожденных: где мы находимся? Обзор. Pediatr Neonatol 57: 265–273

    Статья PubMed Google Scholar

  • 4.

    Саката Х., Йошиока Х., Фудзита К. (1985) Развитие кишечной флоры у младенцев с очень низкой массой тела при рождении по сравнению с нормальными доношенными новорожденными. Eur J Pediatr 144: 186–190

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 5.

    Marchant EA, Boyce GK, Sadarangani M, Lavoie PM (2013) Неонатальный сепсис, вызванный коагулазонегативными стафилококками. Clin Dev Immunol. Том 2013, идентификатор статьи 586076. doi: 10.1155 / 2013/586076

  • 6.

    Cherifi S, Byl B, Deplano A, Nonhoff C, Denis O, Hallin M (2013) Сравнительная эпидемиология изолятов Staphylococcus epidermidis от пациентов с катетерной бактериемией и от здоровых добровольцев. J Clin Microbiol 51 (5): 1541–1547

    CAS Статья PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 7.

    Galdbart JO, Allignet J, Tung HS, Rydèn C, El Solh N (2000) Скрининг на Staphylococcus epidermidis маркеров, различающих штаммы кожной флоры и те, которые вызывают инфекции суставных протезов. J Infect Dis 182: 351–355

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 8.

    van Belkum A, Kluytmans J, van Leeuwen W et al (1995) Многоцентровая оценка произвольно праймированной ПЦР для типирования штаммов Staphylococcus aureus .J Clin Microbiol 33: 1537–1547

    PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 9.

    Shutt CK, Pounder JI, Page SR, Schaecher BJ, Woods GL (2005) Клиническая оценка системы микробного типирования DiversiLab с использованием ПЦР на основе повторяющихся последовательностей для характеристики штаммов Staphylococcus aureus . J Clin Microbiol 43: 1187–1192

    CAS Статья PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 10.

    Geary C, Jordens JZ, Richardson JF, Hawcroft DM, Mitchell CJ (1997) Эпидемиологическое типирование коагулазонегативных стафилококков от внутрибольничных инфекций. J Med Microbiol 46: 195–203

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 11.

    Rohde H, Kalitzky M, Kröger N et al (2004) Обнаружение генов, связанных с вирулентностью, бесполезно для различения инвазивных и комменсальных штаммов Staphylococcus epidermidis из отделения трансплантации костного мозга.J Clin Microbiol 42: 5614–5619

    CAS Статья PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 12.

    Galdbart JO, Morvan A, Desplaces N, el Solh N (1999) Фенотипические и геномные вариации среди Staphylococcus epidermidis штаммов, заражающих суставные протезы. J Clin Microbiol 37: 1306–1312

    CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 13.

    Bradford R, Manan RA, Daley AJ et al (2006) Коагулазонегативные стафилококки у младенцев с очень низкой массой тела при рождении: неспособность генетических маркеров отличить инвазивные штаммы от загрязнителей культуры крови. Eur J Clin Microbial Infect Dis 25: 283–290

    CAS Статья Google Scholar

  • 14.

    Layer F, Ghebremedhin B, König W, König B (2007) Дифференциация Staphylococcus spp. анализом полиморфизма длины концевого рестрикционного фрагмента гена, кодирующего глицеральдегид-3-фосфатдегидрогеназу.J Microbiol Methods 70: 542–549

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 15.

    Handke LD, Conlon KM, Slater SR et al (2004) Генетический и фенотипический анализ фенотипической изменчивости биопленок у нескольких изолятов Staphylococcus epidermidis . J Med Microbiol 53: 367–374

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 16.

    Козицкая С., Чо Ш., Дитрих К., Марре Р., Набер К., Зибур В. (2004) Бактериальный элемент последовательности вставки IS256 встречается преимущественно в нозокомиальных изолятах Staphylococcus epidermidis : ассоциация с образованием биопленок и устойчивостью к аминогликозидам .Infect Immun 72: 1210–1215

    CAS Статья PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 17.

    Gevers D, Huys G, Swings J (2001) Применимость снятия отпечатков пальцев с помощью реп-ПЦР для идентификации видов Lactobacillus . FEMS Microbiol Lett 205: 31–36

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 18.

    Layer F, Ghebremedhin B, Moder KA, König W, König B (2006) Сравнительное исследование с использованием различных методов для идентификации видов Staphylococcus в клинических образцах.J Clin Microbiol 44: 2824–2830

    CAS Статья PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 19.

    Ghebremedhin B, Layer F, König W, König B (2008) Генетическая классификация и различение Staphylococcus видов на основе различных частичных пробелов , 16S рРНК, hsp60 , rpoB92 , rpoB92 , rpoB92 , rpoB92 , и tuf генных последовательностей. J Clin Microbiol 46: 1019–1025

    CAS Статья PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 20.

    Thomas JC, Vargas MR, Miragaia M, Peacock SJ, Archer GL, Enright MC (2007) Улучшенная схема мультилокусного типирования последовательностей для Staphylococcus epidermidis . J Clin Microbiol 45: 616–619

    Статья PubMed Google Scholar

  • 21.

    Кристенсен Г.Д., Симпсон В.А., Бисно А.Л., Бичи Э.Х. (1982) Прилипание продуцирующих слизь штаммов Staphylococcus epidermidis к гладким поверхностям. Infect Immun 37: 318–326

    CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 22.

    Войтычка Р.Д., Орлевска К., Кемпа М. и др. (2014) Образование биопленок и чувствительность к антимикробным препаратам штаммов Staphylococcus epidermidis из больничной среды. Int J Environ Res Public Health 11 (5): 4619–4633

    Статья PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 23.

    Хименес Э., Дельгадо С., Мальдонадо А. и др. (2008) Эпидермальный стафилококк : отличительный признак фекальной микробиоты грудных детей.BMC Microbiol 8: 143–145

    Статья PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 24.

    Delgado S, Arroyo R, Jiménez E et al (2009) Staphylococcus epidermidis штамма, выделенного из грудного молока женщин, страдающих инфекционным маститом: потенциальные признаки вирулентности и устойчивость к антибиотикам. BMC Microbiol 9: 82–93

    Статья PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 25.

    Wieser M, Busse HJ (2000) Быстрая идентификация Staphylococcus epidermidis . Int J Syst Evol Microbiol 50: 1087–1093

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 26.

    Melles DC, Горкинк РФ, Boelens HAM et al (2004) Динамика естественной популяции и распространение патогенных клонов Staphylococcus aureus . J Clin Invest 114: 1732–1740

    CAS Статья PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 27.

    Mendes RE, Deshpande LM, Costello AJ, Farrell DJ (2012) Молекулярная эпидемиология Staphylococcus epidermidis клинических изолята из больниц США. Антимикробные агенты Chemother 56 (9): 4656–4661

    CAS Статья PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 28.

    Koskela A, Nilsdotter-Augustinsson A, Persson L, Söderquist B (2009) Распространенность оперона ica и последовательность вставки IS256 среди Staphylococcus epidermidis изолятов инфекции протезов суставов.Eur J Clin Microbiol Infect Dis 28: 655–660

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 29.

    Du X, Zhu Y, Song Y et al (2013) Молекулярный анализ штаммов Staphylococcus epidermidis , выделенных из местных сообществ и больниц в Китае. PLoS One 8 (5): e62742. DOI: 10.1371 / journal.pone.0062742

    CAS Статья PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 30.

    Богадо И., Лиманский А., Сутич Е. и др. (2002) Молекулярная характеристика метициллин-резистентных коагулазонегативных стафилококков из отделения интенсивной терапии новорожденных. Infect Control Hosp Epidemiol 23: 447–451

    Статья PubMed Google Scholar

  • 31.

    Yazdankhah SP, Asli AW, Sørum H, Oppegaard H, Sunde M (2006) Устойчивость к фузидовой кислоте, опосредованная fusB , у бычьих коагулазонегативных стафилококков. J Antimicrob Chemother 58: 1254–1256

    CAS Статья PubMed Google Scholar

  • 32.

    Villari P, Sarnataro C, Iacuzio L (2000) Молекулярная эпидемиология Staphylococcus epidermidis в отделении интенсивной терапии новорожденных в течение трехлетнего периода. J Clin Microbiol 38: 1740–1746

    CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 33.

    Новаковска М., Руди М., Зиентара М. и др. (2004) Колонизация кишечника новорожденных, которых лечили в отделениях интенсивной терапии, множественными лекарственно-устойчивыми микроорганизмами. Med Dosw Mikrobiol 56: 301–308

    PubMed Google Scholar

  • 34.

    Li H, Xu L, Wang J et al (2005) Конверсия Staphylococcus epidermidis штаммов из комменсальных в инвазивные путем экспрессии локуса ica , кодирующего продукцию экзополисахарида биопленки. Infect Immun 73: 3188–3191

    CAS Статья PubMed PubMed Central Google Scholar

  • Выявление детской диареи, вызванной инфекцией Staphylococcus aureus, передаваемой через грудное молоко

    Выявление детской диареи, вызванной молочной железой

    Milk-Transmission Staphylococcus aureus

    Чжун Чен 1

    Zhong Chen

    • Вэй-и Сиань

    2

    • Ханг Ченг

    1

    • Цзинь-синь Чжэн

    1

    Цин-хуа Ху

    3

    • Чжи-цзянь Юй

    1

    • Qi-wen Deng

    1

    Получено: 11 апреля 2016 г. / Принято: 17 июня 2016 г. / Опубликовано в Интернете: 25 июня 2016 г.

    Springer Science + Business Media New York 2016

    Abstract Staphylococcus aureus — это хорошо- известный орган —

    ism, который вызывает множество инфекционных заболеваний человека

    , включая кожные инфекции, пневмонию, бактериемию,

    и эндокардит.Некоторые из этих микроорганизмов могут передаваться от матери к новорожденному или младенцу с молоком

    при грудном вскармливании. Это исследование направлено на выявление передачи

    S. aureus от здоровых кормящих матерей их младенцам при

    кормлении грудью. Были взяты образцы стула младенцев с диареей и

    грудного молока их матери (всего три пары), и шесть изолятов Staphylococcus aureus были культивированы положительно. Гомология и молекулярные характеристики выделенных штаммов

    были протестированы с использованием импульсного гелевого электрофореза

    (PFGE), спа-типирования и мультилокусного последовательного типирования

    .Кроме того, было проведено обнаружение генов токсинов

    . Каждая пара изолятов имеет один и тот же тип PFGE и спа-тип

    . Четыре типа последовательностей (ST) были обнаружены среди всех

    изолятов; это ST15, ST188 и ST59 соответственно.

    Среди штаммов были обнаружены гены seb, sec и tst, а все штаммы

    были отрицательными по гену pvl. Гомология штаммов S.

    aureus, выделенных из стула младенцев и материнского молока

    , была генетически продемонстрирована, что указывает на то, что грудное вскармливание может иметь важное значение в миссии транс-

    S.aureus, а характер S.

    aureus требует дальнейшей оценки.

    Сокращения

    PFGE Гель-электрофорез в импульсном поле

    Мультилокусное типирование последовательностей MLST

    Минимальные ингибирующие концентрации

    Типы последовательностей ST

    CC Клональный комплекс

    PVL Пантон-Валентайн, устойчивый к лейкоцидину

    Meturelocillus

    M MSSA Метициллин-чувствительный Staphylococcus aureus

    Введение

    Staphylococcus aureus может колонизировать многие участки тела

    , включая передние ноздри, кишечник, пупок

    , пах и подмышечную впадину.Между тем,

    также может передаваться через внутривенные катетеры [3], при использовании гентамицина для местного применения

    [7], а также в результате перенаселенности и нехватки персонала

    , с последующей инфекцией, вызывающей различные виды заболеваний человека. инфекционные заболевания, включая кожные,

    пневмония, бактериемия и эндокардит [14]. S. aureus —

    — наиболее частый патоген, связанный с инфекционным маститом

    [15,17,22]. Были некоторые предположения

    относительно путей передачи S.aureus у

    младенцев, колонизированных этим организмом. Передача от

    младенцев их матерям и передача от медицинского персонала

    сотрудников к матерям и младенцам была предложена как

    & Zhi-jian Yu

    [email protected]

    & Qi-wen Deng

    [email protected]

    1

    Департамент инфекционных заболеваний и ключевая лаборатория Шэньчжэня для

    Эндогенная инфекция, Аффилированная больница Шэньчжэнь Наньшань

    Больница Гуандунского медицинского университета, № 89, Таоюань

    Road, район Наньшань, Шэньчжэнь 518052, Китай

    2

    Центр общественного здравоохранения Янь-тянь, Центральный Банань

    Больница Шэньчжэня, подчиненная Гуандун Медикал

    Университет, № 63, Янтянь-роуд, район Баоань,

    Шэньчжэнь 518102, Китай

    3

    Департамент Лаборатория микробиологии, Центр Шэньчжэня

    по контролю и профилактике заболеваний, № 8, Longyuan Road,

    Район Наньшань, Шэньчжэнь 5 18055, Китай

    123

    Curr Microbiol (2016) 73: 498–502

    DOI 10.1007 / s00284-016-1088-7

    Содержание предоставлено Springer Nature, применяются условия использования. Права защищены.

    (PDF) Высокая скорость передачи Staphylococcus aureus от родительской кожи к детской кишечной флоре

    детская кишечная микрофлора, хотя

    оптимально не подходит для этой ниши.

    БЛАГОДАРНОСТИ

    Мы благодарим Birgitta A

    ˚

    berg за отличную помощь в подборе персонала и

    за собеседование с родителями и Еву A

    ˚

    gren, Jolanta Bonislawska и

    berg за техническую помощь.Мы также благодарим Кристину

    Велиндер-Олссон, Еву Челлин и Керстин Флорен-Йоханссон из бактериологической лаборатории

    Университетской больницы Сальгренска за анализ

    PFGE.

    Исследование было поддержано грантами Шведского фонда

    медицинских наук и исследований аллергии (гранты 2001/0037 A2002

    064 и VS1999-0017), Европейской комиссии (QLK4-2000-

    00538), Шведский совет по медицинским исследованиям (грант K2002-06X-

    14017-02B), Фонд детских домов Гетеборгских масонов, Фонд

    , посвященный астме и аллергии, Фонд Вильгельма и Мартины Лундгрен

    и Фонд Петруса и Августы Хедлунд .

    СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

    1. Адлерберт, И., Б. Карлссон, П. де Ман, Ф. Джалил, С. Р. Хан, П. Ларссон, Л.

    Мелландер, К. Сванборг, А. Э. Волд и Л. А.

    ˚

    . Хансон. 1991. Кишечная колонизация

    энтеробактериями в пакистанской и шведской больнице-де-

    живорожденных младенцев. Acta Paediatr. Сканд. 80: 602–610.

    2. Адлерберт, И., Ф. Джалил, Б. Карлссон, Л. Мелландер, Л. А

    ˚

    . Хансон, П. Ларссон,

    К.Халил, А.Э. Волд. 1998. Высокая скорость оборота штаммов Escherichia coli

    в кишечной флоре младенцев в Пакистане. Эпидемиол. Заразить. 121: 587–598.

    3. Адлерберт, И., Л. А

    ˚

    . Ханссон и А. Э. Волд. 1999. Онтогенез кишечной флоры

    , с. 279–292. В I. R. Sanderson и W. A. ​​Walker (ed.),

    Развитие желудочно-кишечного тракта. B. C. Decker Publishing, Hamil-

    ,

    тонны, Онтарио, Канада.

    4.Балмер, С. Э. и Б. А. Уортон. 1989. Диета и фекальная флора у новорожденных:

    грудное молоко и детские смеси. Arch. Дис. Ребенок. 64: 1672–1677.

    5. Беннет Р., М. Эрикссон, Н. Тафари и К. Э. Норд. 1991. Кишечные бактерии

    новорожденных эфиопских младенцев в связи с лечением антибиотиками и заражением кишечника патогенными грамотрицательными бактериями. Сканд. J. Infect. Дис. 23: 63–69.

    6. Беттельхейм, К., Б. Педди, А. Черешский. 1983. Экология Esche-

    richia coli в родильном отделении в Крайстчерче, Новая Зеландия.Zentbl. Bak-

    териол. Микробиол. Hyg. В 178: 389–393.

    7. Бьоркстен, Б., Э. Сепп, К. Юльге, Т. Вур и М. Микелсаар. 2001. Allergy

    Развитие и кишечная микрофлора на первом году жизни. J.

    Allergy Clin. Иммунол. 108: 516–520.

    8. Crossley, K., and J. Solliday. 1980. Сравнение ректальных мазков и культур кала

    для выявления желудочно-кишечного носительства Staphylococcus au-

    reus. J. Clin.Microbiol. 11: 433–434.

    9. Эллис-Пеглер Р. Б., К. Крэбтри и Х. П. Ламберт. 1975. Фекальная флора

    детей в Соединенном Королевстве. J. Hyg. 75: 135–142.

    10. Файнголд, С. М., В. Л. Саттер, Г. Э. Матисен. 1983. Нормальная аборигенная

    кишечная флора, с. 3. В D. J. Hentges (ed.), Микрофлора кишечника человека в

    здоровье и болезни. Academic Press, Ltd., Лондон, Англия.

    11. Гудиер, Х. М., П. Дж. Уотсон, С. А. Иган, Э. Х.Прайс, П. А. Кенни и Дж. Л.

    Harper. 1993. Микрофлора кожи при атопической экземе впервые в больнице —

    человека. Clin. Exp. Дерматол. 18: 300–304.

    12. Гронлунд М. М., О. П. Лехтонен, Э. Эерола и П. Керо. 1999. Фекальные

    микрофлоры у здоровых младенцев, рожденных разными способами: постоянные изменения кишечной флоры после кесарева сечения. J. Pediatr. Гастро-

    энтерол. Nutr. 28: 19–25.

    13. Гуинан, М. Э., Б. Б. Дэн, Р. Дж. Гвидотти, А. Л. Рейнгольд, Г. П. Шмид, Э. Дж.

    Беттоли, Дж. Г. Лоссик, К. Н. Шандс, М. А. Крамер, Н. Т. Харгретт, Р. Л.

    Андерсон и К. В. Брум. 1982. Колонизация влагалища Staphylococcus

    aureus у здоровых женщин: обзор четырех исследований. Аня. Междунар. Med. 96:

    944–947.

    14. Kluytmans, J., A. van Belkum, and H. Verbrugh. 1997. Назальное носительство

    Staphylococcus aureus: эпидемиология, основные механизмы и сопутствующие риски.Clin. Microbiol. Rev. 10: 505–520.

    15. Линдберг, Э., Ф. Новрузиан, И. Адлерберт, А. Э. Волд. 2000. Длительная

    персистенция штаммов Staphylococcus aureus, продуцирующих суперантиген, в кишечной микрофлоре

    здоровых младенцев. Педиатр. Res. 48: 741–747.

    16. Линнеманн, К. К. младший, Дж. Л. Станек, С. Хорнштейн, Т. П. Барден, Дж. Л. Раух,

    П. Ф. Бонвентр, К. Р. Банчер и А. Бейтинг. 1982. Эпидемиология колонизации гениталий

    Staphylococcus aureus.Аня. Междунар. Med. 96: 940–

    944.

    17. Лундеквист Б., К. Э. Норд и Дж. Винберг. 1985. Состав

    фекальной микрофлоры у детей, находящихся на грудном и искусственном вскармливании от рождения до 8 недель.

    Acta Paediatr. Сканд. 74: 54–58.

    18. Маслоу, Дж. Н., А. М. Слуцкий, Р. Д. Арбейт. 1993. Применение импульсного гель-электрофореза

    в молекулярной эпидемиологии, с. 563–572. В D. Pers-

    ing, T. Smith, F. Tenover и T. White (ed.), Диагностическая молекулярная микро-

    биология, принципы и приложения. Американское общество микробиологии,

    Вашингтон, округ Колумбия

    19. Midtvedt, A.-C. 1994 г. к.э.н. Тезис. Стокгольмский университет, Стокгольм, Швеция —

    den.

    20. Ноувен, Дж. Л., А. ван Белкум и Х. А. Вербру. 2001. Детерминанты носительства

    Staphylococcus aureus. Нет. J. Med. 59: 126–133.

    21. Симхон А., Дж. Р. Дуглас, Б. С. Драсар и Дж. Ф. Сотхилл. 1982 г.Влияние кормления

    на фекальную флору младенцев. Arch. Дис. Ребенок. 57: 54–58.

    22. Старк П. Л. и А. Ли. 1982. Микробная экология толстой кишки

    младенцев, вскармливаемых грудью и на искусственном вскармливании, в течение первого года жизни. J. Med.

    Microbiol. 15: 189–203.

    23. Ванденберг, М. Ф., и Х. А. Вербру. 1999. Носительство Staphylococcus

    aureus: эпидемиология и клиническое значение. J. Lab. Clin. Med. 133: 525–534.

    24. van der Waaij, D.1979. Колонизирующая резистентность пищеварительного тракта у

    человек и

    животных. Zentbl. Бактериол. 7 (Дополнение 7): 155–161.

    25. Уолд, А. Э. 1998. Гипотеза гигиены пересмотрена: является ли рост частоты аллергии

    следствием изменений кишечной флоры? Аллергия 53: 20–25.

    26. Здразилек, Дж., П. Петрас, Х. Срамова, В. Субертова, Л. Маскова. 1988.

    Staphylococcus aureus в родильном отделении. I. Колонизация матерей и

    новорожденных и выживаемость различных S.aureus у колонизированных особей. J.

    Hyg. Эпидемиол. Microbiol. Иммунол. 32: 49–57.

    27. Зеттерстром Р. 1999. Грудное вскармливание и взаимодействие младенца и матери. Acta

    Педиатр. Дополнение 88: 1–6.

    534 LINDBERG ET AL. J. CLIN.MICROBIOL.

    Пониженная энтеробактериальная и повышенная стафилококковая колонизация детского кишечника: влияние гигиенического образа жизни?

    Распространенность факультативных бактерий и ее связь со способом доставки.

    Прошло 2 месяца, прежде чем у> 90% младенцев появились энтеробактерии ( e.грамм. E. coli , Klebsiella или Enterobacter ) в их стуле. Напротив, у всех младенцев были стафилококки (коагулазонегативные стафилококки и / или S. aureus ) с 3-х дневного возраста. Энтерококки также появились раньше энтеробактерий (рис. 1).

    Рисунок 1

    Частота колонизации основными группами факультативных бактерий у шведских младенцев. Энтеробактерии ( открытых символа, ), стафилококки ( закрашенных символа, ) и энтерококки ( заштрихованных символа, ) были идентифицированы в образцах фекалий, полученных от 116 шведских младенцев в разные моменты времени в течение первого года жизни.

    Влияние способа родоразрешения показано на Рисунке 2. Коагулазонегативные стафилококки и энтерококки колонизировались вагинально и родившимся после кесарева сечения младенцам одинаково рано (рис. 2, a и b ). Напротив, младенцы, родившиеся после кесарева сечения, реже содержали E. coli , чем младенцы, рожденные естественным путем в течение первых 6 месяцев (рис. 2 c ) (3 дня, p = 0,01; 1 неделя, p = 0,001; 2 недели, p = 0,009; 4 недели, p = 0.06; 2 мес., п. = 0,12; 6 мес, п = 0,03).

    Рисунок 2

    Колонизация кишечника факультативными бактериями в зависимости от способа доставки. Колонизация младенцев, рожденных вагинально ( закрашенных символа, ) и рожденных после кесарева сечения ( открытых символа ), коагулазонегативными стафилококками ( a ), ( b ) энтерококками, ( c ) E. coli , и ( d ) другие энтеробактерии в разные моменты времени в течение первого года жизни.Звездочки указывают на значительные различия между младенцами, рожденными через естественные родовые пути и после кесарева сечения (* p <0,05, ** p <0,01, *** p <0,001).

    Энтеробактерии, отличные от E. coli (в основном Klebsiella и Enterobacter spp.), Были выделены реже от естественных родов, чем от новорожденных после кесарева сечения (3 дня, p = 0,07; 1 неделя, ) p = 0,04; 2 недели, p = 0.02) (рис.2 d ).

    Уровни популяции факультативных бактерий.

    Факультативные бактерии колонизировали на высоком уровне в течение первых 6 месяцев, но затем умеренно уменьшились (6 месяцев, 10 9,0 ; 12 месяцев, 10 8,3 КОЕ / г фекалий, p <0,0001). Уровни мало различались у младенцев, рожденных через естественные родовые пути и после кесарева сечения, при условии, что они были колонизированы рассматриваемыми бактериями. Однако младенцы, рожденные после кесарева сечения, колонизированы энтеробактериями, отличными от E.coli имела более высокое количество этих бактерий, чем естественные роды у младенцев к 6 мес. (10 8,6 против 10 7,7 КОЕ / г фекалий, p = 0,0006).

    На рис. 3 показано количество различных факультативных бактерий в кале у новорожденных с колонией, рожденных через естественные родовые пути и после кесарева сечения, вместе взятых. E. coli были на 0,5–1 логарифмическую единицу больше, чем другие энтеробактерии и энтерококки в течение первого года. Количество во всех трех группах значительно снизилось после 6 месяцев ( p <0.0001 для каждого сравнения) (рис. 3).

    Рисунок 3

    Уровни популяции различных факультативных бактерий у младенцев с положительным посевом. Уровни популяции (log КОЕ / г фекалий) E. coli ( закрашенных столбца ), других энтеробактерий ( заштрихованных столбцов ), энтерококков ( пунктирных столбца ) и коагулазонегативных стафилококков ( столбцов ) у младенцев с положительной культурой в разные моменты времени после рождения. Включены младенцы, родившиеся через естественные родовые пути и после кесарева сечения.Представлены средние уровни популяции (столбцы) и стандартные отклонения. Звездочки над столбиками указывают на значительное уменьшение количества по сравнению с предыдущим случаем выборки ( p <0,001).

    Коагулазонегативные стафилококки изначально были довольно многочисленными, но значительно уменьшились по сравнению с предыдущей выборкой в ​​возрасте от 4 недель до 6 месяцев ( p <0,0001 для всех сравнений).

    Распространенность анаэробных бактерий и их связь со способом доставки.

    Анаэробные бактерии были выделены из фекалий 112/116 младенцев в возрасте 1 недели. Первоначально доминировали бифидобактерии. Clostridia догнала к 6 мес., Тогда как Bacteroides первоначально колонизировали <1/3 и лишь медленно увеличивалась по распространенности через 2 мес. (Рис. 4).

    Рисунок 4

    Частота колонизации основными группами анаэробных бактерий у шведских младенцев. Бифидобактерии ( открытых символа, ), клостридии ( заштрихованных символов, ) и Bacteroides spp.( закрашенных символа, ) были идентифицированы в образцах фекалий, полученных от 116 шведских младенцев в разные моменты времени в течение первого года жизни.

    Влияние режима родов на анаэробную колонизацию показано на Рисунке 5. Бифидобактерии чаще встречались у младенцев, родившихся через естественные родовые пути, чем у младенцев, рожденных после кесарева сечения, через 1 неделю после родов (69% против 44%, p = 0,08) (Рис. . 5 a ). Клостридии были значительно более распространены среди младенцев, рожденных после кесарева сечения (1 нед, p = 0.01; 2 нед, p = 0,003) (рис.5 b ).

    Рисунок 5

    Колонизация кишечника анаэробными бактериями в зависимости от способа доставки. Колонизация младенцев, рожденных вагинально ( закрашенных символа ) и рожденных после кесарева сечения ( открытых символа ), бифидобактериями ( a ), ( b ) клостридиями, ( c ) C. d ) Bacteroides в разные моменты времени в течение первого года жизни.Звездочки указывают на значительные различия между младенцами, рожденными через естественные родовые пути и после кесарева сечения (* p <0,05, ** p <0,01).

    Колонизация C. difficile неуклонно росла в течение первого года (рис. 5 c ). Хотя младенцы, родившиеся после кесарева сечения, чаще были колонизированы C. difficile , разница была незначительной во всех временных точках (12 мес., p = 0,11).

    Bacteroides spp.были обнаружены примерно у 30% новорожденных, рожденных естественным путем, в первые 2 мес., 43% в 6 мес. и 75% в возрасте 1 года (рис. 5 d ). Bacteroides впервые появился у новорожденных, рожденных после кесарева сечения, в возрасте 2 месяцев, когда 1/17 была колонизирована (рис. 5 d ). Bacteroides spp. были менее частыми при кесаревом сечении, чем родившиеся через естественные родовые пути младенцы в течение первого года жизни (1 неделя, p = 0,01; 2 недели, p = 0,003; 4 недели, p = 0.006; 2 мес., п. = 0,07; 12 мес., п. = 0,08).

    Уровни популяции анаэробных бактерий.

    Количество анаэробных популяций увеличилось с 10 10,1 до 10 10,3 КОЕ / г в возрасте от 1 недели до 1 года ( p = 0,01, включая только колонизированных младенцев). Уровни были одинаковыми у детей, рожденных через естественные родовые пути и после кесарева сечения.

    Если присутствовали, то наиболее многочисленными были бифидобактерии и Bacteroides (рис. 6). Клостридиальные споры составили 10 5 –10 6 КОЕ / г фекалий.Уровни вегетативных клостридиальных бактерий не могут быть определены из-за отсутствия селективной среды. Однако клостридии часто росли в большом количестве (10 8 –10 10 КОЕ / г фекалий) на чашке с неселективным кровяным агаром Brucella .

    Рисунок 6

    Уровни популяции различных анаэробных бактерий у младенцев с положительным посевом. Уровни популяции (log КОЕ / г фекалий) Bacteroides ( закрашенных столбца ), бифидобактерий ( заштрихованных столбцов ), спорообразующих клостридий ( пунктирных столбца ) и C.difficile ( полоски ) у младенцев с положительной культурой в разные моменты времени после рождения. Включены младенцы, родившиеся через естественные родовые пути и после кесарева сечения. Представлены средние уровни популяции (столбцы) и стандартные отклонения.

    Влияние аллергической наследственности на характер колонизации кишечника.

    Когорта была выбрана так, чтобы иметь высокий риск развития аллергии, и у большинства младенцев были аллергические родители. У тринадцати младенцев в семье не было аллергии. Их образец колонизации не отличался от большинства, за исключением того, что они значительно реже заселялись клостридиями в возрасте 1 года ( p = 0.014).

    Влияние антибиотиков на характер кишечной колонизации.

    Колонизация в первые 6 мес. Сравнивалась между младенцами, получавшими или не получавшими антибиотики в этот период. Колонизация в 12 мес. Сравнивалась между младенцами, получавшими или не получавшими антибиотики в возрасте от 6 до 12 мес.

    Младенцы, получавшие антибиотики, реже имели клостридии, чем дети, не получавшие лечения (1 нед., p <0,10; 2 недели, p <0,05; 1 месяц, p = 0.19; 6 мес., п. <0,01; 12 мес., п. = 0,11). Вместо этого в течение первых 2 месяцев жизни у них чаще было E. coli (3 дня, 1 месяц, p <0,10; 2 месяца, p <0,05) и S. aureus ( 3 дня, p = 0,15; 1 неделя, p = 0,11; 2 недели, p <0,10; 2 месяца p = 0,17), чем у детей, не получавших лечения.

    Младенцы от матерей, получавших антибиотики перед родами, реже имели E.coli , чем у других младенцев (3 дня, 1, 2 и 4 недели, p <0,05; 2 мес., p <0,01; 6 месяцев, p = 0,05). У них также реже встречались бифидобактерии (1 мес., p, <0,05) и клостридии (2 мес., p, <0,05; 6 месяцев, p, <0,10).

    Длительная персистенция штаммов Staphylococcus aureus, продуцирующих суперантиген, в кишечной микрофлоре здоровых младенцев

  • 1

    Адлерберт I, Хансон Л.А., Уолд А.Е. 1999 Онтогенез кишечной флоры.В: Sanderson IR, Walker WA (eds) Развитие желудочно-кишечного тракта . ДО Н.Э. Декер, Гамильтон, Онтарио, 279–292.

    Google Scholar

  • 2

    Aniansson G, Alm B, Andersson B., Larsson P, Nylen O, Peterson H, Rigner P, Svanborg M, Svanborg C 1992 Колонизация носоглотки в течение первого года жизни. J Infect Dis 165 : 38–42.

    Артикул Google Scholar

  • 3

    Blackwell CC, MacKenzie DA, James VS, Elton RA, Zorgani AA, Weir DM, Busuttil A 1999 Токсигенные бактерии и синдром внезапной детской смерти (СВДС): флора носоглотки в течение первого года жизни. FEMS Immunol Med Microbiol 25 : 51–58.

    CAS Статья Google Scholar

  • 4

    Харрисон Л.М., Моррис Дж. А., Телфорд Д. Р., Браун С. М., Джонс К. 1999 Бактериальная флора носоглотки в младенчестве: влияние возраста, пола, времени года, вирусной инфекции верхних дыхательных путей и положения во сне. FEMS Immunol Med Microbiol 25 : 19–28.

    CAS Статья Google Scholar

  • 5

    Вайнс М., Гарсия М. Е., Саенс П., Мора М. А., Мата Л., Сабхарвал Х, Сванборг С. 1997 Колонизация носоглотки у коста-риканских детей в течение первого года жизни. Pediatr Infect Dis 9 : 852–858.

    Google Scholar

  • 6

    Stark PL, Lee A 1982 Бактериальная колонизация толстой кишки недоношенных новорожденных с низкой массой тела. J Hyg Camb 89 : 59–67.

    CAS Статья Google Scholar

  • 7

    Lundequist B, Nord CE, Winberg J 1985 Состав фекальной микрофлоры у детей, находящихся на грудном и искусственном вскармливании, от рождения до 8 недель. Acta Paediatr Scand 74 : 54–58.

    Артикул Google Scholar

  • 8

    Sepp E, Julge K, Vasar M, Naaber P, Björkstén B, Mikelsaar M 1997 Кишечная микрофлора эстонских и шведских младенцев. Acta Paediatr 86 : 956–961.

    CAS Статья Google Scholar

  • 9

    Dinges MM, Orwin PM, Schlievert PM 2000 Экзотоксины Staphylococcus aureus . Clin Microbiol Rev 13 : 16–34.

    CAS Статья Google Scholar

  • 10

    Тодд Дж., Фишаут М., Капрал Ф., Велч Т. 1978. Синдром токсического шока, связанный со стафилококками фаговой группы 1. Ланцет 25 : 1116–1118.

    Артикул Google Scholar

  • 11

    Reingold AL, Broome CV, Gaventa S, Hightower AW, Toxic Study Group 1989 Факторы риска синдрома менструального токсического шока: результаты мультистатного исследования случай-контроль. Rev. Infect Dis 11 : S35

    Артикул Google Scholar

  • 12

    Strickland I, Hauk PI, Trumble AE, Picker LJ, Leung DYM 1999 Доказательства участия суперантигена в нахождении Т-клеток в коже при атопическом дерматите. J Invest Dermatol 112 : 249–253.

    CAS Статья Google Scholar

  • 13

    Zorgani A, Essery SD, Madani OA, Bentley AJ, James VS, MacKenzie DA, Keeling JW, Rambaud C, Hilton J 1999 Обнаружение пирогенных токсинов Staphylococcus aureus при синдроме внезапной детской смерти. FEMS Immunol Med Microbiol 25 : 103–108.

    CAS Статья Google Scholar

  • 14

    Малам Дж. Э., Каррик Г. Ф., Телфорд Д. Р., Моррис Дж. А. 1992 Стафилококковые токсины и синдром внезапной детской смерти. J Clin Pathol 45 : 716–721.

    CAS Статья Google Scholar

  • 15

    Leung DYM, Meissner HC, Fulton DR, Murray DL, Kotzin BL, Schlievert PM 1993 Синдром токсического шока, секретирующий токсины Staphylococcus aureus при синдроме Кавасаки. Ланцет 342 : 1385–1388.

    CAS Статья Google Scholar Staphylococcus aureus с синдромом Кавасаки, осложненным ишемической болезнью сердца. Pediatr Res 42 : 268–272.

    CAS Статья Google Scholar

  • 17

    Björksten B, Naaber P, Sepp E, Mikelsaar M 1999 Кишечная флора у детей 2-летнего возраста из Эстонии и Швеции с аллергией. Clin Exp Allergy 29 : 342–346.

    Артикул Google Scholar

  • 18

    Wold AE 1998 Гипотеза гигиены пересмотрена: является ли рост частоты аллергии следствием изменений кишечной флоры ?. Аллергия 53 : 20

    CAS Статья Google Scholar

  • 19

    Wold AE 1999 Роль бактериальной адгезии в создании нормальной микрофлоры кишечника. В: Hanson LA, Yolken RH (eds) Пробиотики, другие факторы питания и кишечная микрофлора . Липпинкотт-Рэйвен, Филадельфия, 47–61.

    Google Scholar

  • 20

    Tenover FC, Arbeit R, Archer G, Biddle J, Bryne S 1994 Сравнение традиционных и молекулярных методов типирования изолятов Staphylococcus aureus . J Clin Microbiol 32 : 407–415.

    CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 21

    Tambic A, Power EGM, Talsania H, Anthony RM, French GL 1997 Анализ вспышки нефаготипируемого метициллин-устойчивого Staphylococcus aureus с использованием анализа случайно амплифицированной полиморфной ДНК. J Med Microbiol 35 : 3092–3097.

    CAS Google Scholar

  • 22

    Hansen SL, Stewart BJ 1978 Надежный тест для идентификации и предполагаемой идентификации некоторых клинически значимых анаэробов. Am J Clin Pathol 69 : 36–40.

    CAS Статья Google Scholar

  • 23

    Джаярао Б.М., Гиллеспи Б.Э., Оливер С.П. 1996 Применение случайным образом амплифицированного дактилоскопирования полиморфной ДНК для идентификации видов бактерий, выделенных из коровьего молока. J Food Protect 59 : 615–620.

    CAS Статья Google Scholar

  • 24

    Mattews KR, Oliver SP 1994 Дифференциация Staphylococcus видов с помощью ДНК-фингерпринта на основе полимеразной цепной реакции. J Food Protect 57 : 486–489.

    Артикул Google Scholar

  • 25

    Johansson ML, Quednau M, Molin G, Ahrn’e S 1995 Случайно амплифицированная полиморфная ДНК (RAPD) для типирования штаммов Lactobacillus plantarum . Lett Appl Microbiol 21 : 155–159.

    CAS Статья Google Scholar

  • 26

    Sears HJ, Brownlee I 1951 Дальнейшие наблюдения персистенции отдельных штаммов Escherichia coli в кишечном тракте человека. J Bacteriol 63 : 47–57.

    Google Scholar

  • 27

    Tullus K 1988 Колонизация фекалий P-фибриированными Escherichia coli в возрасте от 0 до 18 месяцев. Эпидемиол. Инфекция 100 : 185–191.

    CAS Статья Google Scholar

  • 28

    Wold AE, Caugant DA, Lidin-Janson G, de Man P, Svanborg C 1992 Резидентные штаммы Escherichia coli толстой кишки часто проявляют уропатогенные характеристики. J Infect Dis 165 : 46–52.

    CAS Статья Google Scholar

  • 29

    Adlerberth I, Jalil F, Carlsson B, Mellander L, Hanson LÅ, Larsson P, Khalil K, Wold AE 1998 Высокая скорость оборота штаммов Escherichia coli в кишечной флоре младенцев в Пакистане. Эпидемиол. Инфекция 121 : 587–598.

    CAS Статья Google Scholar

  • 30

    Kuhn I, Tullus K, Möllby R 1986 Колонизация и наличие фенотипов Escherichia coli в кишечнике детей в возрасте от 0 до 18 месяцев. Инфекция 14 : 7–12.

    CAS Статья Google Scholar

  • 31

    Adlerberth I, Carlsson B, de Man P, Jalil F, Khan SR, Larsson P, Mellander L, Svanborg C, Wold AE, Hanson LÅ 1991 Колонизация кишечника Enterobacteriaceae у младенцев, доставленных в больницы Пакистана и Швеции . Acta Paediatr Scand 80 : 602–610.

    CAS Статья Google Scholar

  • 32

    Balmer SE, Wharton BA 1989 Рацион и фекальная флора новорожденного; грудное молоко и детские смеси. Arch Dis Child 64 : 1672–1677.

    CAS Статья Google Scholar

  • 33

    Simhon A, Douglas JR, Drasar BS, Soothill JF 1982 Влияние кормления на фекальную флору младенцев. Arch Dis Child 57 : 54–58.

    CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

  • 34

    Hogevik H, Söderqvist B, Tung H-S, Olaison L, Westberg A, Ryden C., Tarkowski A, Andersson R 1998 Факторы вирулентности Staphylococcus aureus штаммов, вызывающих инфекционный эндокардит — сравнение со штаммами от кожных инфекций. APMIS 106 : 901–908.

    CAS Статья Google Scholar

  • 35

    Lehn N, Shaller E, Wagner H, Krönke M 1995 Частота синдрома токсического шока, продуцирующие токсин и энтеротоксин, клинические изоляты Staphylococcus aureus . Eur J Clin Microbiol Infect Dis 14 : 43–46.

    CAS Статья Google Scholar

  • 36

    Melconian AK, Burn Y, Fleurette J 1983 Производство энтеротоксинов, фаговое типирование и серотипирование Staphylococcus aureus штаммов, выделенных из клинических материалов и пищевых продуктов. Дж. Хиг Лондон 91 : 235–242.

    CAS Статья Google Scholar

  • 37

    Здразилек Ю., Петрас П., Срамова Н., Субертова В., Маскова Л. 1988 Staphylococcus aureus в родильном отделении. I. Колонизация матерей и новорожденных и выживание различных типов S. aureus в колонизированных особях. J Hyg Epidemiol Microbiol Immunol 32 : 49–57.

    CAS PubMed Google Scholar

  • 38

    Schlievert PM, Blomster DA 1983 Производство стафилококкового пирогенного экзотоксина типа C: влияние физических и химических факторов. J Infect Dis 147 : 236–242.

    CAS Статья Google Scholar

  • 39

    Herias MV, Midtvedt T, Hanson LÅ, Wold AE 1995 Роль Escherichia coli в кишечной колонизации у гнотобиотических крыс. Инфекция иммунол 63 : 4781–4789.

    CAS Google Scholar

  • 40

    Herias MV, Midtvedt T, Hanson LÅ, Wold AE 1997 Escherichia coli K5 капсула усиливает колонизацию толстой кишки у гнотобиотической крысы. Инфекция иммунол 65 : 531-536.

    CAS Google Scholar

  • 41

    Gordon AE, Saadi At, MacKenzie DA, Molony N, James VS, Weir DM, Busuttil A, Blackwell CC 1999 Защитный эффект грудного вскармливания в отношении синдрома внезапной детской смерти (СВДС): ΙΙΙ Обнаружение IgA антитела в грудном молоке, которые связываются с бактериальными токсинами, участвующими в СВДС. FEMS Immunol Med Microbiol 25 : 175–182.

    CAS Статья Google Scholar

  • 42

    МакГанн В.Г., Роллинз Дж. Б., Мейсон Д. В. 1971 Оценка устойчивости к стафилококковому энтеротоксину B: естественно приобретенные антитела человека и обезьяны. J Infect Dis 124 : 206–213.

    CAS Статья Google Scholar

  • 43

    Vergeront JM, Stolz SJ, Crass BA, Nelson DB, Davis JP, Bergdoll MS 1983 Распространенность сывороточных антител к стафилококковому энтеротоксину F среди жителей Висконсина: последствия для синдрома токсического шока. J Infect Dis 148 : 692–698.

    CAS Статья Google Scholar

  • 44

    Al Madani O, Gordon AE, Weir DM, Raza MW, Busuttil A, Blackwell C 1999 Пирогенные токсины Staphylococcus aureus при внезапной неожиданной ночной смерти у взрослых и детей старшего возраста: факторы, влияющие на контроль воспалительных реакций на токсины синдрома токсического шока. FEMS Immunol Med Microbiol 25 : 207–219.

    CAS Статья Google Scholar

  • 45

    Беннет Р., Эрикссон М., Зеттерстрём Р. 1981 Рост заболеваемости неонатальной септицемией: возбудитель и предрасполагающие факторы риска. Acta Paediatr Scand 70 : 207–210.

    CAS Статья Google Scholar

  • 46

    van Camp JM, Tomaselli V, Coran AG 1994 Бактериальная транслокация у новорожденного. Curr Opin Pediatr 6 : 327–333.

    CAS Статья Google Scholar

  • 47

    Sarff LD, McCracken GH, Schiffer MS 1975 Эпидемиология Escherichia coli K1 у здоровых и больных новорожденных. Ланцет 17 : 1099–1104.

    Артикул Google Scholar

  • 48

    эль Мохандес А.Е., Кейзер Дж.Ф., Джонсон Л.А., Рефат М., Джексон Б.Дж. 1993 Аэробы, выделенные в фекальной микрофлоре младенцев в отделении интенсивной терапии: связь с употреблением грудного молока и системным сепсисом. Am J Infect Control 21 : 231–234.

    CAS Статья Google Scholar

  • Уход за инфекцией, вызванной Staphylococcus aureus

    На этой странице:
    Уход за собой
    У себя дома

    Берегите инфекции!

    • Гной или выделения из ран очень заразны.

    Забота о себе

    Вымойте руки

    • Часто мойте руки водой с антибактериальным мылом или спиртосодержащим средством для рук, особенно после смены повязок или прикосновения к дренажу.
    • Важно, как вы моете руки.
      • При использовании воды с мылом необходимо тереть руки не менее 20 секунд, чтобы избавиться от бактерий.
      • При использовании дезинфицирующего средства для рук на спиртовой основе нанесите столько, чтобы покрыть все поверхности рук.
    • Вымойте руки! Плакат
      На этом плакате 11×17 показаны шесть этапов мытья рук водой с мылом или два этапа очистки дезинфицирующими средствами для рук на спиртовой основе.

    Принятие душа и уход за собой

    • Часто принимайте ванну или душ, обязательно используйте мыло для мытья тела во время душа или ванны.
    • Не используйте совместно полотенца, тряпки для мытья посуды, бритвы или другие личные вещи.

    Уход за больными

    • Если вы получили порез или царапину на коже, промойте ее водой с мылом, а затем наложите повязку.
    • Не трогайте язвочки; если вы все-таки прикоснетесь к язве, немедленно вымойте руки.
    • Накройте инфицированную область чистыми сухими повязками.
    • Закройте инфицированные язвы повязкой и вымойте руки сразу после наложения повязки.
    • По возможности носите одежду, закрывающую повязки и язвы.
    • Немедленно выбрасывайте использованные повязки.
    Перевязки

    Спорт и спортзал

    • Не занимайтесь контактными видами спорта, пока ваши язвы не заживут.
    • Не ходите в общественный тренажерный зал, сауну, гидромассажную ванну или бассейн, пока не заживут язвы.

    У вас дома

    Прачечная

    При стирке нужно быть осторожным. Грязная одежда и постельное белье могут распространять стафилококк или бактерии MRSA.

    • Прикасаясь к белью или меняя простыни, держите грязное белье подальше от тела и одежды, чтобы на одежду не попали бактерии.
    • Надевайте одноразовые перчатки, чтобы прикасаться к белью, загрязненному биологическими жидкостями, такими как дренаж из язвы, моча или кал.
    • Немедленно положите белье в стиральную машину или в полиэтиленовый пакет, чтобы его можно было постирать.
    • Постирайте белье теплой или горячей водой, по возможности используйте отбеливатель.
    • Сушите в теплой или горячей сушилке и убедитесь, что одежда полностью высохла.
    • Мойте руки после прикосновения к грязным простыням или одежде и перед чистым бельем, даже если вы были в перчатках.
    • Выбросьте перчатки после их снятия (не используйте их повторно) и вымойте руки.

    Одежда и постельные принадлежности

    • Меняйте простыни и полотенца не реже одного раза в неделю.
    • Меняйте одежду ежедневно.
    • Не кладите грязную одежду или одежду, которую вы только что надели, обратно в шкаф или ящики, пока они не выстираны.

    Уборка дома

    • Ежедневно очищайте часто используемые области вашего дома (ванные комнаты, столешницы и т. Д.) С помощью бытового дезинфицирующего средства или раствора отбеливателя.
    • Обращайте внимание на предметы, к которым часто прикасаются — выключатели, дверные ручки, телефоны, туалеты, раковины, ванны и душевые, а также кухонные стойки.
    • Протрите поверхность или предмет дезинфицирующим средством и дайте им высохнуть.
    Дезинфицирующие средства, используемые:
    • Вы можете использовать любое купленное в продуктовом магазине чистящее средство со словом «дезинфицирующее средство», не забудьте прочитать этикетку и следовать инструкциям
    • Сделайте свой собственный раствор из отбеливателя и воды:
      • Смешайте две чайные ложки отбеливателя с одним литром воды в бутылке с распылителем и промаркируйте это «раствор отбеливателя»
      • Делайте его свежим каждый раз, когда планируете чистку, потому что отбеливатель испаряется из воды, делая его менее эффективным
      • Никогда не смешивайте отбеливатель с другими чистящими средствами, особенно с аммиаком
      • Храните раствор отбеливателя в недоступном для детей месте и не разливайте его в бутылки, которые можно принять за напиток.
        alexxlab

        Добавить комментарий

        Ваш адрес email не будет опубликован. Обязательные поля помечены *

          2019 © Все права защищены.
      . Изоляты детских фекалий . . Оценка PFGE сходных молекулярных линий в фекалиях и молоке .
      Ящики . 7 дней . 14 дней . 35 дней . молочные изоляты . Штаммы . тип спа . MLST . Шаблоны PFGE a .
      Корпус 1 C5515 C6429 до C6436 C5515, C6429, C6433, C6435 t322367 ST5 C5524, C5525 C5526, C5527 C6438 C5522, C5524, C5526, C6438 t322 ST5 A
      C, C, C5535, C5536, C5537 C6437 C5520, C5537, C6437 t136 ST34 B
      Корпус 4 C550 C550 ST1869 C
      Корпус 5 C5513 C5514
      Чехол 6 C5516 C5517
      Корпус 8 C5511, C5512
      9066 903 906
      Корпус 10 C5530
      Корпус 11 903 0366
      Корпус 12 C5533 C5532, C5534, C6439, C6440
      Изоляты детских фекалий . . Оценка PFGE сходных молекулярных линий в фекалиях и молоке .
      Ящики . 7 дней . 14 дней . 35 дней . молочные изоляты . Штаммы . тип спа . MLST . Шаблоны PFGE a .
      Корпус 1 C5515 C6429 до C6436 C5515, C6429, C6433, C6435 t322367 ST5 C5524, C5525 C5526, C5527 C6438 C5522, C5524, C5526, C6438 t322 ST5 A
      C, C, C5535, C5536, C5537 C6437 C5520, C5537, C6437 t136 ST34 B
      Корпус 4 C550 C550 ST1869 C
      Корпус 5 C5513 C5514
      Чехол 6 C5516 C5517
      Корпус 8 C5511, C5512
      9066 903 906
      Корпус 10 C5530
      Корпус 11 903 0366
      Корпус 12 C5533 C5532, C5534, C6439, C6440